Sources lumineusesObjectifs4x/0.13 Air 10x/0.3 Air Ph1 - 20x/0.5 Air DIC
40x/0.75 Air Ph2 - 60x/0.85 Air
- 100x/1.3 Huile Ph3
Position | Nom | Marque | Nom complet | ID | Grossissement | Ouverture numérique | Immersion | Type | Distance de travail (mm) | Transmittance (% [nm]) | Technique | Épaisseur du couvre-objet (mm) |
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1 | 4x/0.13 Air | Nikon | 4x/0.3 Air Plan Fluor | MRH00040 | 4x | 0.13 | Air | Plan Fluor | 17.1 |
| BF, Fluo | - | 2 | 10x/0.3 Air | Nikon | 10x/0.3 Air Plan Fluor Ph1 DLL | MRH10100 | 10x | 0.3 | Air | Plan Fluor | 16 | >75% [400-800] Max % @500nm | BF, Pol, PhC, Fluo | 0.17 | 3 | | Nikon | 20x/0.5 Air Plan Fluor DIC M | MRH10200 | 20x | 0.5 | | Plan Fluor | 2.1 |
| BF, Fluo | 0.17 | 4 | 40x/0.75 Air | Nikon | 40x/0.75 Air Plan Fluor Ph2 DLL | MRH10400 | 40x | 0.75 | Air | Plan Fluor | 0.72 | >80% [400-750] Max % @500nm | BF, Pol, PhC, Fluo | 0.17 | 5 | 60x/0.85 Air | Nikon | 60x/0.85 Air Plan Fluor | MRH00600 | 60x | 0.85 | Air | Plan Fluor | 0.30 |
| BF, Fluo | Ajustable 0.11-0.23 | 6 | | Nikon | 100x/1.3 Huile Plan Fluor Ph3 DLL |
| 100x | 1.3 | Huile | Plan Fluor | 0.2 | >75% [400-800] Max % @500nm
| BF, Pol, PhC, Fluo | 0.17 |
BF: Champ clair (Bright-field) Pol: Lumière polarisée PhC: Contraste de phase |
Cubes de filtres- DAPI/Hoechst/AMCA
- FITC/EGFP
- TRITC/Rhodamine
- Texas Red
- Vide
- Vide
DétecteurCamera | Nikon DS-Ri2 |
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Sensor Type | CMOS |
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Sensor Category
| Color |
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Nb Pixels
| 16.25 M |
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Pixel Layout | 4908 x 3264 |
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Pixel size | 7.3 um
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Sensor size
| 36.0 mm x 23.9 mm |
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Sensor diameter
| 43.3 mm
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Bit depth
| 14-bit |
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Speed at full resolution | 6 images/s
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Max QE
| 77 % |
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Readout noise | 2.2 e⁻ |
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Cooling
| Passive |
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Dark Current
| 0.6 e⁻/pixel/sec |
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Full well capacity
| 60 000 e-
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Dynamic Range
| 1:25000 |
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Interface
| USB 3.0 |
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Mount
| F-mount |
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Nikon_Camera_DS-Ri2_Manual.pdf |
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- Si ce n'est pas déjà fait, allumez l'ordinateur (#1) et connectez-vous à Windows en utilisant vos identifiants UdeM
- Retirez la housse de protection du microscope
- Allumez la multiprise d’alimentation (#2) sur la droite du microscope
Si la lumière transmise est nécessaire, allumez l’interrupteur sur le côté droit du microscope (#4) - Lors de la première utilisation de l'instrument , il est nécessaire d'importer la configuration du microscope avant de démarrer le logiciel. Voir la section « Première utilisation » ci-dessous.
Démarrez le logiciel NIS-Elements
- Démarrez le logiciel Lumencor SOLA Controller
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Lorsque vous utilisez l’instrument pour la première fois, il est nécessaire d’importer la configuration du microscope dans le logiciel. Cette procédure est généralement effectuée lors de la séance de formation. Toutefois, elle peut également être utilisée pour réinitialiser le logiciel en cas d'affichage incorrect ou de dysfonctionnement. Attention : lancer cette procédure effacera tous vos protocoles d'expérience et réinitialisera le logiciel à ses paramètres d'usine. Demandez de l'aide si vous n’êtes pas certain de vouloir continuer. |
- Si ouvert, fermez le logiciel NIS-Elements et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
- Sur le Bureau ouvrez le dossier Softwares
- Ouvrez le logiciel NIS Settings Utility
- Cliquez sur l’onglet Import
- Cliquez sur Browse
- Naviguez jusqu’à C:\Users\Public\Documents
- Sélectionnez le fichier Nikon_E600_NIS Settings.bin
- Cliquez Open
- Sélectionnez tous les items
- Cliquez Import
- Cliquez OK
- Fermez le logiciel NIS Settings Utility
- Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel NIS-Elements
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Pendant cette procédure, vous allez : Mettre le microscope dans une configuration sécurtaire Charger votre échantillon Trouver et ajuster la mise au point
Une fois terminé, votre échantillon sera prêt pour l’acquisition. - Si cela n’a pas encore été fait, sélectionnez l’objectif de plus faible grossissement 4x
Les objectifs 4× est le plus sûr à utiliser en raison de sa grande distance de travail (17 mm). L’échantillon apparaîtra net bien avant que l’objectif ne s’en approche. Il est recommandé de toujours faire la mise au point d’abord avec l'objectif le plus sûr. Comme les objectifs sont parafocaux, effectuer la mise au point avec ces objectifs facilitera la localisation de l’échantillon lors du passage à des objectifs de plus fort grossissement. |
- Placez la lame test sur la platine du microscope, avec la lamelle côté objectif
L’utilisation d’une lame test réduira considérablement le temps nécessaire pour configurer l’instrument. |
- Si nécessaire, déplacez la platine pour que l'échantillon soit centré sur l'objectif
- Sélectionnez le mode d'imagerie désiré (Champs clair ou Fluorescence:
- Pour le champ clair utilisez le filtre #5, allumez la lampe halogène (l'interrupteur est sur le coté droit du microscope). Vous pouvez ajuster l'intensité en tournant le bouton sur le coté gauche du microscope
- Pour la fluorescence utilisez le filtre #1 pour DAPI, #2 pour FITC, #3 pour TRITC, #4 pour TexasRed. Ouvrez l'obturateur pour la fluorescence situé sous la roue de filtre. Vous pouvez allumer ou éteindre ewt gérer l'intensité de la lumière fluorescence avec le logiciel Lumencor SOLA Controller
- Assurez-vous que la lumière soit bien visible aux oculaires avant de continuer
- Ajustez la mise au point avec la molette principale tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
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Faire d’abord la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire avant de sélectionner un objectif de plus fort grossissement. |
Après avoir effectué la mise au point initiale: - Sélectionnez l'objectif à air désiré (10x, 20x, 40x ou 60x)
L’objectif 60x est le meilleur objectif à Air car il possède la plus grande ouverture numérique (0.85). |
- Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
Votre échantillon est prêt pour l’acquisition ! |
Après avoir effectué la mise au point initiale: - Tournez la tourelle des objectifs pour vous placer entre les objectifs 60x et 100x (cela vous laissera de la place pour l'étape suivante)
Déposer une goutte d’huile sur votre échantillon Tournez la tourelle des objectifs pour placer l'objectif 100x au dessus de l'échantillon Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
Votre échantillon est prêt pour l’acquisition ! |
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- Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
- À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
- Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C: |
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- Enregistrez vos données
- Fermez le logiciel NIS-Elements
- Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
- Si vous avez utilisé des objectifs à immersion, nettoyez-les avec du nettoyant pour lentilles et du papier
- Sélectionnez l'objectif 4x et remettez les objectifs en position sécuritaire
- Éteindre la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
- Éteindre l'ordinateur
- Couvrir l’instrument avec la housse de protection
- Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
- Laissez le microscope et l’espace de travail propre
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DépannageCeci peut survenir lorsque le logiciel NIS-Elements ne parvient pas à établir la connexion avec la caméra, par exemple lorsque la caméra n'est pas allumée. - Fermez le logiciel NIS-Elements
- Allumez la caméra (la multiprise du microscope et l'interrupteur sur le dessus de la caméra)
- Vérifiez la connexion USB entre la caméra et l'ordinateur
- Allumez le logiciel NIS-Elements
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FAQNon. C'est un microscope droit conçu pour l'observation de spécimens montés entre lames et lamelles (d'épaisseur 0.17mm). |
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