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id | Description |
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title | Description |
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| Microscope droit Nikon 90i
Pavillon Roger Gaudry, Local R-619 Instrument gracieusement partagé sur la plateforme par le Dr Yves Brun
- Applications
- Lumière transmise
- Contraste de phase
- Lumière polarisée
- Fluorescence
- Imagerie d'échantillons montés entre lame et lamelle
Sources lumineuses
Objectifs - 2x/0.1 Air WD 8.5
- 60x/1.4 Oil DIC WD 0.13
- 40x/0.65 Air WD 0.65
- 100x/1.4 Oil Ph3 WD 0.17
- Empty
- 100x/1.4 Oil DIC WD 0.17
Développer |
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title | Caractéristiques complètes des objectifs |
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Position | Nom | Marque | Nom complet | Identifiant | Grossissement | Ouverture numérique | Immersion | Type | Distance de travail (mm) | Transmittance (% [nm]) | Technique | Épaisseur du couvre-objet (mm) |
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1 | 2x/0.1 Air | Nikon | 2x/0.1 Air Plan Apo M25x0.75 | MRD70020 | 2x | 0.1 | Air | Plan Apo | 8.5 | >90% [400-1000] | BF,Pol, PhC, Fluo | 0 - 0.17 | 2 | 60x/1.4 Oil DIC | Nikon | 60x/1.4 Oil Plan Apo VC DIC N2 M25x0.75 |
| 60x | 1.4 | | Plan Apo VC | 0.13 |
| BF, Pol, DIC, Fluo | 0.17 | 3 | | Nikon | 40x/0.65 Air Ph2 DL M25x0.75 | MRD31905 | 40x | 0.65 | | Plan Apo Lambda | 0.65 | >80% [475-750] | BF, Pol, PhC, Fluo | 0.17 | 4 | 100x/1.45 Oil DIC | Nikon | 100x/1.45 Oil Plan Apo Lambda DIC N2 M25x0.75 | MRD01905 | 100x | 1.45 | | Plan Apo Lambda | 0.13 | >80% [475-750] | BF, Pol, DIC, Fluo | 0.17 | 5 | 4x/0.2 Air | Nikon | 4x/0.2 Air Plan Apo Lambda M25x0.75 | MRD00045 | 4x | 0,2 | Air | Plan Apo Lambda | 20 | >80% [400-1000] | BF, Fluo | 0.17 | 6 | 20x/0.75 Air DIC | Nikon | 20x/0.75 Air Plan Apo Lambda DIC N2 M25x0.75 | MRD00205 | 20x | 0.75 | Air | Plan Apo Lambda | 1.0 | >80% [400-950] | BF, Pol, DIC, Fluo | 0.17 |
BF: Champ clair (Bright-field) Pol: Lumière polarisée PhC: Contraste de phase DIC: Contraste d'interférence différentiel |
- Filtres d'excitation
D350/50 x 112717 325-375 - S403/12 x 66825 397-409
- 492/18 x 29538 483-501
- S572/23 x 66750 560-583
- S436/10x 66893 431-441
- S500/20 x 66729 490-510
- 83103 x 53940
- 83102 x 65557
- Vide
- Bloque
Développer |
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title | Caractéristiques complètes des filtres d'excitation |
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Position | Nom | Marque | Identifiant | Filtre d'excitation | Commentaires |
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1 | DAPI |
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| 350/50x [325-375] |
| 2 |
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| 403/12x [397-409] |
| 3 | GFP |
|
| 492/18x [483-501] |
| 4 | TRITC |
|
| 572/23x [560-583] |
| 5 | CFP |
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| 436/10 [431-441] |
| 6 | YFP |
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| 500/20 [490-510] |
| 7 | 83103 x 53940 |
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| 8 | 83102 x 65557 |
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| 9 | Vide |
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| 10 | Bloque |
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- Cubes de filtres
Dichroique DAPI/FITC/TRITC 83700 - Dichroique CFP/YFP 86002v1 JP4 C76403
- Dichroique et mutli-bande d'emission CFP/YFP 51017BS C76404
Dichroique et mutli-bande d'emission UV/D/F/TR 83000v2 Vide Vide
Développer |
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title | Caractéristiques complètes des cubes |
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Position | Nom | Marque | Identifiant | Filtre d'excitation | Miroir dichroïque | Filtre d'émission | Commentaires |
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1 | DAPI/FITC/TRITC |
| 83700 | None |
| None |
| 2 | CFP/YFP |
| 86002v1 | None |
| None |
| 3 | CFP/YFP |
| 51017BS | None | Multibande | Multibande |
| 4 | UV/D/F/TR |
| 83000v2 | None | Multibande | Multibande |
| 5 | Vide |
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| 6 | Vide |
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- Filtres d'emission
S460/36 M 51088 442-478 S530/35 m 61364 512-548 S630/60 m 65953 600-660 S470/30 m 66705 455-485 S535/30 M 66767 520-550 - Vide
- Vide
- Vide
- Vide
- Vide
Développer |
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title | Caractéristiques complètes des filtres d'émission |
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Position | Nom | Marque | Identifiant | Filtre d'émission | Commentaires |
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1 | DAPI |
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| 460/36m [442-478] |
| 2 | FITC |
|
| 530/35m [512-548] |
| 3 | TRITC |
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| 630/60m [600-660] |
| 4 | CFP |
|
| 470/30m [455-485] |
| 5 | YFP |
|
| 535/30m [520-550] |
| 6 | Vide |
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| 7 | Vide |
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| 8 | Vide |
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| 9 | Vide |
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| 10 | Vide |
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id | Guide d'utilisation |
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title | Guide d'utilisation |
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UI Expand |
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expanded | true |
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title | Démarrage |
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| - Allumez l’ordinateur (#1)
- Retirer la housse de protection du microscope
- Allumez la multiprise d’alimentation à droite du microscope (#2)
Si l'incubation est nécessaire, allumez le module d'incubation Okolab (#3A) et le bain-marie (#3B) et ouvrez les bonbonnes de CO2 (#3C) et d'azote N2 (#3D) Avertissement | Assurez-vous que le bain-marie et l'humidificateur soient proprement remplis avec de l'eau distilléeAllumez la source lumineuse X-cite 120Q (#3) et ouvrir l'iris d'intensité (#4) Avertissement |
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La lampe X-cite doit etre allumer pour 30min et vice-versa |
Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows Démarrez le logiciel NIS-Elements
Info |
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Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope dans le logiciel avant de le démarrer. Pour ce faire, suivre les instructions Paramétrage du logiciel. |
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UI Expand |
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| Sur le microscope: Poussez délicatement le bras de la lumière transmise du microscope vers l'arrière- Appuyez sur Escape pour faire descendre les objectifsla platine
- Sélectionnez l'objectif 4xobjectif de plus faible grossissement
- Installez l'échantillon de test visible à l'oeil nu sur l'encart en vérifiant de bien mettre la lamelle du coté de l'objectif
- Centrez l'échantillon sur l'objectif à l'aide du joystickRemettez délicatement le bras de la lumière transmise du microscope vertical
- Appuyez une nouvelle fois sur Escape pour désengager le mécanisme de protection des objectifs
Dans le logiciel NIS-Elements: - Cliquez sur la configration optique Brightfield
- Cliquez sur Live
- Ajustez l'intensité lumineuse et la durée d'exposition pour obtenir une image correctement exposée
- Ajustez le focus pour obtenir une image nette
- Vous pouvez ensuite retirer l'échantillon de test et installer votre échantillon d'intérêt qui sera déjà au focus
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UI Expand |
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| - Enregistrez vos données
- Fermez le logiciel NIS-Elements
- Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
- Éteindre l'ordinateur
- Si utilisés, nettoyez les objectifs à huile avec du nettoyant et du papier à lentille
- Si l'incubation a été utilisée, éteindre le module d'incubation Okolab (#3A) et le bain-marie (#3B) et fermez les bonbonnes de CO2 (#3C) et d'azote N2 (#3D)
- Éteindre la source lumineuse XCite 120 Q
- Éteindre la mutliprise d'alimentation #2Attendre que le refroidissement du Spectra X soit terminé et éteindre la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
- Couvrir l’instrument avec la housse de protection
Remarque |
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| - Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
- Laissez le microscope et l’espace de travail propre
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UI Expand |
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| - Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
- À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
- Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. A l’intérieur créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
Remarque |
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Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C: |
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UI Expand |
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title | Paramétrage du logiciel |
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| Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation. Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple. Remarque |
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Attention, cette procédurerétablira les paramètres originaux du logiciel et supprimera tous vos protocoles et paramètres personnels. |
- Si ouvert, fermez le logiciel NIS-Elements et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
- Sur le Bureau ouvrez le dossier Softwares
- Ouvrez le logiciel NIS Settings Utility
- Cliquez sur l’onglet Import
- Cliquez sur Browse
- Naviguez jusqu’à votre bureau
- Sélectionnez le fichier Nikon-Ti2 90i Settings.bin
- Cliquez Open
- Sélectionnez tous les items
- Cliquez Import
- Cliquez OK
- Fermez le logiciel NIS Settings Utility
- Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel NIS-Elements
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id | Trajet lumineux |
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title | Trajet lumineux |
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| Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair, contraste de phase) et en lumière réfléchie (fluorescence).
PDF |
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name | LightPath_Nikon Ti2.pdf |
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id | Fiche Technique |
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title | Fiche Technique |
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| Section disponible dans la version anglaise.
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id | Dépannage et FAQ |
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title | Dépannage et FAQ |
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| Dépannage
UI Expand |
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title | Du liquide se forme dans la chambre d'incubationÀ l'ouverture du logiciel un message d'erreur apparait: Camera driver not found |
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| Cela peut survenir lorsque l'humidificateur est trop rempli. - Éteindre le module d'incubation Okolab et le bain-marie
- Enlever votre échantillon et le mettre de coté
- Sécher la chambre d'incubation avec un tissu
- Enlever délicatement le bouchon de l'humidificateur
Avertissement |
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Redoublez de précautions lorsque vous manipulez l'humidificateur. Il est en verre et fragile. |
- Retirer du liquide de l'humidificateur
Info |
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L'humidificateur doit être rempli au maximum au 2/3 |
- Fermez l'humidificateur en mettant le bouchon
- Rallumez le module d'incubation Okolab et le bain-marie
- Remettre votre échantillon
ordinateur est démarré avant la camera. - Redémarrer l'ordinateur seulement
|
FAQ
UI Expand |
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title | Puis-je utiliser ce microscope pour observer des cellules en culture? |
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| OuiNon. C'est un microscope inversé droit conçu pour l'observation de specimen en culture (petri ou multi-puits). Les objectifs sont optimisés pour l'imagerie de plaques multi-puits à fond de verre, Il est aussi possible d'imager des specimen montés entre lame et lamelle d'épaisseur 0.17mm. Pour l'imagerie longue durée il faut être vigilant aux effets de la photo-toxicité. |
Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la version anglaise. |
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