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id | Description |
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title | Description |
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| Microscope à haut débit GE InCell Analyzer 6000
Pavillon JA Bombardier, Local 3129 Instrument octroyé au Dr Steve Michnick par la Fondation Canadienne pour l'Innovation (FCI) - Applications
- Lumière transmise
- Pseudo contraste de phase et DIC
- Fluorescence
- Imagerie à haut débit
- Imagerie longue durée
Sources lumineuses
Développer |
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title | Caractéristiques complètes du Toptica iChrome |
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Source lumineuse | Polychroïque | Longueurs d'onde d'excitation | Fluorophores compatibles | Puissance nominale (mW) |
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405nm | 390/40 | [370-410] | DAPI, Hoechst | 50 | 488nm | 482/18 | [473-491] | FITC, GFP, YFP | 25 | 561nm | | [559-569] | Cy3, DsRed, TxRed | 30 | 642nm | 640/14 | [632-647] | Cy5, Cy5.5 | 50 |
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Objectifs - 10x/0.45 Air WD 4.0
- 20x/0.75 Air WD 1.0
- 40x/0.6 Air WD 2.7-3.7
- 60x/0.95 Air WD 0.15
Développer |
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title | Caractéristiques complètes des objectifs |
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Position | Nom | Marque | Nom complet | Identifiant | Grossissement | Ouverture numérique | Immersion | Type | Distance de travail (mm) | Transmittance (% [nm]) | Technique | Épaisseur du couvre-objet (mm) |
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1 | 10x/0.45 Air | Nikon | 10x/0.45 Air Plan Apo M25x0.75 | MRD00101 | 20x | 0.5 | Air | Plan Fluor | 4.0 | >80% [TBD-TBD] | BF, p-PhC, p-DIC, Fluo | 0.17 | 2 | 20x/0.75 Air | Nikon | 20x/0.75 Air Plan Apo DIC N2 M25x0.75 | MRD00201 | 60x | 1.4 | | Plan Apo | 1.0 | >80% [TBD-TBD] | BF, p-PhC, p-DIC, Fluo | 0.17 | 3 | | Nikon | 40x/0.6 Air Plan Fluor ELWD M25x0.75 | MRH08430 | 100x | 1.45 | | Plan Fluor | 2.7-3.7 | >80% [TBD-TBD] | BF, p-PhC, p-DIC, Fluo | 0.17 | 4 | 60x/0.95 Air | Nikon | 60x/0.95 Air Plan Apo M25x0.75 | MRD00600 | 100x | 1.45 | | Plan Apo | 0.15 | >80% [TBD-TBD] | BBF, p-PhC, p-DIC, Fluo | 0.17 |
BF: Champ clair (Bright-field) p-PhC: Pseudo-contraste de phase p-DIC: Pseudo-contraste d'interférence différentiel |
- Cubes de filtres
DAPI GFP Cy3 Cy5 - Cy5.5
Développer |
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title | Caractéristiques complètes des filtres |
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Position | Nom | Marque | Identifiant | Miroir polychroïque (Transmission) | Filtre d'émission | Bande passante effective |
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1 | DAPI | TBD | TBD | BP 420/20 [430-462] | 455/50 [430-480] | [430-480] | 2 | GFP | TBD | TBD | BP 446/32; 524/42; 600/36; 732/137 | 525/20 [515-535] | [515-535] | 3 | Cy3 | TBD | TBD | BP 446/32; 524/42; 600/36; 732/137 | 605/52 [579-631] | [582-618] | 4 | Cy5 | TBD | TBD | BP 446/32; 524/42; 600/36; 732/137 | 707/72 [671-743] | [671-743] | 5 | Cy5.5 | TBD | TBD | BP 446/32; 524/42; 600/36; 732/137 | 720/60 [690-750] | [690-750] |
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- Détecteur
- sCMOS Monochrome 2560 x 2160 pixels, 16-bit, pixel 6.5um x6.5um, capteur 16.6mm x 14.0mm
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id | Guide d'utilisation |
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title | Guide d'utilisation |
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expanded | true |
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title | Démarrage |
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| Si nécessaire, allumez le du microscope (#1) Info |
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| L’interrupteur n’est pas facilement accessible et se trouve à l’arrière du côté droit de l’appareil |
- Si nécessaire, allumez l’ordinateur (#2)
- Utilisez vos identifiants UdeM pour vous connecter à Windows
Démarrez le logiciel IN Cell Analyzer 6000
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UI Expand |
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| Dans le logiciel IN Cell Analyzer: - Cliquez sur Eject pour ouvrir la porte d'accès
- Insérer votre échantillon dans l'espace prévu à cet effet en respectant l'orientation indiquée
Cliquez sur Load pour fermer la porte d'accès
Remarque |
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| Pour une utilisation avec l'objectif 60x il est absoluement nécessaire d'utiliser une plaque multi-puit avec un fond de verre. L'épaisseur de verre doit être de 0.17mm. Nous recommandons les plaques suivantes: Link in New Window |
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linkText | Greiner SensoPlate |
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| Plus plus 96-well plate #655891 | href | https://shop.gbo.com/en/row/products/bioscience/microplates/sensoplate-glass-bottom-plates/bs-sensoplate-plus/655891.html |
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Link in New Window |
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linkText | Nunc Optical CVG 96-well 164588 |
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href | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/164588 |
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UI Expand |
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| - Récuppérez vos échantillons
- Cliquez sur Load pour refermer la porte d'accèsEnregistrez vos données
- Fermez le logiciel In Cell Analyzer
- Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
- Récuppérez vos échantillons
- Cliquez sur Load pour refermer la porte d'accès
- Éteindre l'ordinateur
Remarque |
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| - Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
- Laissez le microscope et l’espace de travail propre
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UI Expand |
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| - Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
- À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
- Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. A l’intérieur créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
Remarque |
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| Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C: |
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UI Expand |
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title | Première utilisation |
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| Lors de la première utilisation, il est nécessaire de créer et définir le type de plaque utilisée. Créer une nouvelle plaque Dans le logiciel IN Cell Analyzer: - Sélectionnez dans le menu Application>Plate\Slide Manager...
- Sélectionnez Cliquez sur l'icone New Plate\Slide
- Sélectionnez le numéro nombre de puits de votre plaque (6, 24, 96 etc...)
- Ajustez les paramètres suivants:
- Nom: Votre-Nom_Votre-plaque
- Hauteur de plaque, épaisseur du fond et volume du puit (Plate height, Bottom Thickness, well volume) habituellement fournis dans la fiche technique du produit par le manufacturier
- Le matériau utilisé plastique ou verre (Plastic or Glass)
- Si nécessaire ajustez le nombre de lignes et de colonnes ainsi que la forme du puit (rond ou rectangulaire)
- Cliquez sur OK
- Fermez la fenetre fenêtre du Plate/Slide Manager
Info |
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| title | Mesurer la hauteur de plaque et l'épaisseur du fond de plaque Naviguez Dans le logiciel IN Cell Analyzer: - Cliquez sur le Dashboard
et sélectionnez - Dans Objective Lens
Selectionnez - selectionnez l'objectif 10x
- Sur le plan de la plaque cliquez sur le centre d'un puit contenant un échantillon pour centrer ce puit sur l'objectif
Sur le Dashboard sous - Dans le menu du Dashboard sélectionnez Plate/Slide
cliquez - Cliquez sur Verify LAF
- Si les 2 pics
sont - détéctés (lignes verticales bleues)
en accord avec les pics de - correspondent aux pics mesurés (courbe noire)
, cliquez - Cliquez sur Apply Measured Parameters
- Cliquez sur OK
- Cliquez sur Yes
- Si les 2 pics
ne sont pas correctement détectés, modifiez le - détéctés (lignes verticales bleues) ne correspondent aux pics mesurés (courbe noire),
- Modifiez la valeur du bottom thickness et répétez l'opération.
- Fermez la fenêtre Laser Autofocus Plate/Slide Verification
Info |
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title | L'écart de A1 (Offset) et la distance interpuit peuvent être mesurés |
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| Écart Mesurer l'écart du puit A1 (Offset) Dans le logiciel In Cell Analyzer: Naviguez - Cliquez sur le Dashboard
et sélectionnez - Dans Objective Lens
Selectionnez - selectionnez l'objectif 10x
Cliquez - Dans la liste des canaux, cliquez sur le bouton +
pour ajouter un channel brightfield- et ajoutez un canal en lumière transmise (brightfield)
- À droite du
Sur le - plan de la plaque, cliquez
sur le centre du puit A1 pour centrer ce puit - sur
l'objectifCliquez sur - le bouton Setup Preview Imaging
Dessiner - Dessinez un rectangle autour du puit A1
- Cliquez sur preview (sur le panneau d'acquisition en haut à droite de l'écran)
- Attendre que la prévisualisation soit générée
- Sur le plan de la plaque, cliquez sur le centre réel du puit A1 pour centrer ce puit sur l'objectif
Dans le dashboard Dans le menu du Dashboard sélectionnez Plate/Slide et cliquez Cliquez sur Edit Plate puis sur Define Upper Left Well Cliquez sur Yes - Vérifiez que le cercle jaune coincide avec les bords du puit
Cliquez sur Yes
Distance inter-puit (Offset) 1 à 11 Vérification
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id | Trajet lumineux |
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title | Trajet lumineux |
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| Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair) et en lumière réfléchie (fluorescence).
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| Manuels disponibles version anglaise. |
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id | Fiche Technique |
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title | Fiche Technique |
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| Section disponible dans la version anglaise.
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id | Dépannage et FAQ |
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title | Dépannage et FAQ |
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| Dépannage UI Expand |
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expanded | true |
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title | Dépannage | Le microscope n'affiche pas la lumière verte habituelle, que faire? |
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| Habituellement, ce microscope affiche une lumière verte lorsqu'il est opérationel et une lumière orange lorsqu'il est en cours d'utilisation. Une lumière rouge est allumée signifie que le microscope n'est pas fonctionnel. Dans ce cas veuillez contacter le responsable de la plateforme.
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FAQ UI Expand |
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expanded | true |
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title | FAQ | Puis-je utiliser ce microscope pour observer des cellules en culture? |
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| Non Oui. Ce microscope est conçu pour l'acquisition à haut-débit de spécimen en plaques multi-puits. Vous pouvez également faire l'acquisition d'images de specimen entre lame et lamelle (épaisseur 0.17mm) |
UI Expand |
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expanded | true |
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title | Comment éteindre le microscope? |
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| Habituellement le microscope reste allumé. Cependant, il est préférable de l'éteindre en cas de non-utilisation prolongée. Pour ce faire: - Naviguez dans le menu Application> Hardware>
- Cliquez sur Shutdown Instrument
- Attendre que le microscope s'éteigne
- Le logiciel se ferme automatiquement
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