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Microscope inversé Zeiss Axio-Observer Z1
Pavillon Roger Gaudry, Local R-421


Accès sur demande auprès de la responsable de la Plateforme de microscopie du département de Pharmacologie et Physiologie.
Consultez les et la de la

  • Applications
    • Lumière transmise
    • Contraste de phase
    • Fluorescence

  • Sources lumineuses

    • Lampe LED pour la lumière transmise

    • Lampe X-Cite 120Q 120 W (350~600nm) pour la fluorescence

  • Objectifs

    1. 2.5x/0.085 Air WD 8.8

    2. Vide

    3. 10x/0.25 Air Ph1 WD 6.5

    4. Vide
    5. 20x/0.5 Air Ph2 WD 2.0
    6. 40x/0.95 Air WD 0.25
PositionNomMarqueNom completIdentifiantGrossissementOuverture numériqueImmersionTypeDistance de travail (mm)Transmittance
(% [nm])		TechniqueÉpaisseur du couvre-objet (mm)
120x/0.5 AirZeiss20x/0.50 Ph2
EC Plan-Neofluar
M27		420351-991020x2.0AirPlan Neofluar2.0Not AvailableBF, PhC, Fluo0.17
2

Vide












3

40x/0.95

Zeiss40x/0.95
Plan-Apochromat Corr
M27		420660-9970

40x

0.95

Air

Plan ApoChromat0.25>80% [400-840]BF, Fluo

0.13 - 0.21
Bague d'ajustement

4Vide










52.5x/0.085 AirZeiss2.5x/0.085
EC Plan-Neofluar
M27 		420320-99022.5x0.085AirPlan Neofluar8.8>95% [400-750]BF, Fluo0.17
610x/0.25 AirZeiss10x/0.25 Ph1
N-Achroplan
M27 		420941-991110x0.25AirAchroPlan

6.5

Not availableBF, PhC, Fluo0.17
  • Cubes de filtres
    1. DAPI
    2. GFP
    3. Rhodamine
    4. DHE (dihydroethidium)
    5. Cy5
PositionNomMarqueIdentifiantFiltre d'excitation Miroir dichroïqueFiltre d'émissionCommentaires
1DAPI
Filter Set 49		Zeiss

488049-9901

365/50
[325-375]		395LP445/50
[420-470]
2GFP
Filter Set 13		Zeiss488013-0000

470/20
[460-480]

495LP

517/25
[505-530]
3Rhodamine
Filter Set 43		Zeiss

000000-1114-101

545/25
[533-567]		570LP605/70
[570-640]
4DHECustom

Custom

500/50
[475-525]

540LP580/20
[570-590]		Caractéristiques indéterminées
Valeurs supposées
5Cy5
Filter Set 50		Zeiss488050-9901640/30
[625-655]		660LP

690/50
[665-715]


6Vide





  • Détecteur
    • Caméra CCD Zeiss AxioCam MR R3 1388 x 1040 pixels,12-bit, 13 images/s à pleine résolution, taille du capteur 8.9 mm x 6.7 mm 1388 x 1040


  1. Allumez l’ordinateur (#1)
  2. Allumez la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
  3. Appuyez sur le bouton de démarrage du microscope situé à l'arrière gauche (#3)

  4. Si la fluorescence est nécessaire, allumez la lampe X-Cite (#4A) et ouvrir le diaphragme (#4B)

    La lampe X-Cite doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa

  5. Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows

  6. Démarrez le logiciel Zen Blue

    Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope dans le logiciel. Pour ce faire, suivre les instructions Paramétrage du logiciel.

  1. Enregistrez vos données
  2. Fermez le logiciel Zen Blue
  3. Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
  4. Éteindre l'ordinateur
  5. Si la fluorescence a été utilisée, éteindre la lampe X-Cite (#4A)
  6. Éteindre la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
  7. Couvrir l’instrument avec la housse de protection

Rappels Importants

  • Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
  • Laissez le microscope et l’espace de travail propre
  • La lampe X-Cite doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa
  • Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
  • À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
  • Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).

Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:

Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation.
Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple. 

Attention, cette procédure supprimera tous vos protocoles d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel.

  1. Si ouvert, fermez le logiciel Zen Blue et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
  2. Sur le Bureau ouvrez le dossier Documentation
  3. Double-cliquez sur Zen Settings for Axio-Observer Z1
  4. Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel Zen Blue


Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair, contraste de phase) et en lumière réfléchie (fluorescence).

Schémas des trajets lumineux Zeiss Axio-Observer Z1 (anglais pdf)


Section disponible dans la version anglaise.


Section disponible dans la version anglaise.


Dépannage

Ce microscope est motorisé pour la majeure partie de ses composants, cependant la source lumineuse X-Cite est manuelle. Il est donc important de vérifier que le diaphragme sur la lampe X-Cite (#4B) est ouvert (position haute).

  1. Sur la lampe X-Cite
  2. Tournez le diaphragme de contrôle de l'intensité (#4B) vers le haut


FAQ

Oui. C'est un microscope inversé conçu pour l'observation de spécimen en cultures.
Les objectifs sont optimisés pour observer au travers de plaques multi-puits à fond de verre.
Il est également possible d'observer des échantillons entre lame et lamelles (d'épaisseur 0.17mm).

Oui, mais... Ce microscope possède un module d'incubation permettant le maintien de la température et de l'atmosphère. Cependant, il ne possède pas de module permettant le maintien du plan focal dans le temps (Definite Focus). Il est possible que la mise au point ne soit pas aussi bonne lors de longues experiences.

Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la version anglaise.


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