Vous regardez une version antérieure (v. /display/Microscopie/Leica+DM2000) de cette page.

afficher les différences afficher l'historique de la page

« Afficher la version précédente Vous regardez la version actuelle de cette page. (v. 62) afficher la version suivante »


Microscope droit Leica DM2000

Pavillon Desmarais, Local 3248
Accès sur demande auprès du laboratoire de Dre Samaha


  • Applications
    • Lumière transmise
    • Fluorescence
    • Caméra couleur
  • Sources lumineuses

    • Lampe halogène 30 W pour la lumière transmise

    • Lampe au mercure 100 W (350~600 nm) pour la fluorescence

  • Objectifs

    1. 10x/0.3 Air WD 11

    2. 20x/0.5 Air WD 1.15

    3. 40x/0.75 Air WD 0.37

PositionNomMarqueNom completIdentifiantGrossissementOuverture numériqueImmersionTypeDistance de travail (mm)Transmittance
(% [nm])
TechniqueÉpaisseur du couvre-objet (mm)
110x/0.3 AirLeica10x/0.3 Air HC Plan Fluotar500650510x0.3AirPlan Fluor11

>80% [385-775]
Max 95% @550nm
Courbe de transmittance

BF, Fluo0.17
2

20x/0.5 Air

Leica20x/0.5 Air HC Plan Fluotar50650320x

0.5

Air

Plan Fluor1.15

>80% [395-800]
Max 90% @530nm
Courbe de transmittance

BF, Fluo0.17
3

40x/0.75

Leica

40x/0.75 Air HC Plan Fluotar

506144

40x

0.75

Air

Plan Fluor0.37

>80% [420-850]
Max 89% @550nm
Courbe de transmittance

BF, Fluo0.17
4Vide










5Vide










6Vide










BF: Champ clair (Bright field)

  • Cubes de filtres
    1. I3 (GFP, YFP)
    2. N2.1 (TRITC)
PositionNomMarqueIdentifiantFiltre d'excitation Miroir dichroïqueFiltre d'émissionCommentaires
1I3LeicaI3470/40
[450-490]
510LP515LP
[520+]

Le filtre d'émission est très large.
Attention au chevauchement des spectres (contamination lumineuse croisée)

2N2.1LeicaN2.1

537/45
[515-560]

580LP

590LP
[595+]
Le filtre d'émission est très large.
Attention au chevauchement des spectres (contamination lumineuse croisée)
3Vide






4Vide






5Vide





  • Détecteur
    • Caméra couleur Leica DFC425 C 2592 × 1944 pixels, 14-bit en mode monochrome, 36-bits en mode couleurs, 6 images/s à pleine résolution


  1. Allumez l’ordinateur (#1)
  2. Si la fluorescence est nécessaire, allumez le module d’alimentation de la lampe au mercure (#2)

    La lampe au mercure doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa

  3. Si la lumière transmise est nécessaire, allumez l’interrupteur sur le côté droit du microscope (#3)

  4. Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows

  5. Démarrez le logiciel LAS

    Lors de la première utilisation, le logiciel LAS demande à être activé et à s'enregistrer. 

    1. Sélectionnez: Do not tell me about this again en bas à gauche
    2. Cliquez sur Close
  1. Enregistrez vos données
  2. Fermez le logiciel LAS
  3. Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
  4. Éteindre l'ordinateur
  5. Si la fluorescence a été utilisée, éteindre le module d’alimentation de la lampe au mercure (#2)

    La lampe au mercure doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa

  6. Si la lumière transmise a été utilisée, éteindre la lampe halogène sur le côté droit du microscope (#3)
  7. Attendre que les lampes aient refroidies et couvrir l’instrument avec la housse de protection

Rappels Importants

  • Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
  • Laissez le microscope et l’espace de travail propre
  • Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
  • À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
  • Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).

Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:

Lors de la première utilisation, le logiciel LAS demande à être activé et s'enregistrer. 

  1. Sélectionnez: Do not tell me about this again en bas à gauche
  2. Cliquez sur Close

Cette procédure permettra de mettre le microscope dans une configuration sécuritaire pour pouvoir charger vos échantillons et effectuer la mise au point. À la fin de cette procédure le microscope sera prêt pour l'acquisition.


Sur le microscope :

  1. Tournez la molette d'ajustement de la mise au point pour faire descendre la platine dans sa position la plus basse
  2. Placez votre échantillon sur la platine du microscope avec le couvre-objet vers l'objectif
  3. Sélectionnez l'objectif 10x

    L’objectif 10x est le plus sécuritaire car il possède la plus grande distance de travail (11 mm). L'échantillon apparaitra parfaitement net bien avant que l'objectif ne s'approche de celui-ci. Il est recommandé de toujours faire la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire

  4. Sélectionnez le mode d'imagerie désiré (Champs clair ou Fluorescence). Les schémas des trajets lumineux peuvent vous aider à configurer le microscope pour le mode d'imagerie désiré.

    Assurez-vous que la lumière soit bien visible aux oculaires avant de continuer.

  5. Ajustez la mise au point avec la molette principale tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
  6. Une fois la première mise au point effectuée, vous pouvez changer d'objectif pour celui désiré

    L’objectif 40x est le meilleur car qui possède la plus grande ouverture numérique (0.8) il offrira une résolution latérale de 839nm à une longueur d'onde de 550nm.

  7. Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

  8. Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !



Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (champs clair) et en lumière réfléchie (fluorescence).


Erreur de création de la macro 'viewpdf'

com.atlassian.confluence.macro.MacroExecutionException: com.atlassian.confluence.macro.MacroExecutionException: The viewfile macro is unable to locate the attachment "LightPath_Leica DM2000.pdf" on this page


Section disponible dans la version anglaise.


Section disponible dans la version anglaise.


Dépannage

Ceci peut survenir lorsqu'un élément n'est pas dans la bonne configuration le long du trajet lumineux. Les schémas du trajet lumineux peuvent vous aider à identifier le problème. 

  1. Vérifiez que l'alimentation de la lampe au mercure est allumé (#2)
  2. Vérifiez que la lampe au mercure située en haut à l'arrière du microscope est allumée. Elle dégage une forte chaleur. Attention aux risques de brulure.
  3. Vérifiez que les filtres de densité neutre (N16, N4, N2) situés en arrière sur le coté droit du microscope sont en position basse (out)
  4. Vérifiez que l'obturateur manuel situé en arrière sur le coté droit du microscope est en position basse (out)
  5. Vérifiez que les diaphragmes d'ouverture (A) et de champ (F) situés en arrière sur le coté droit du microscope sont ouverts en position haute
  6. Vérifiez que la tourelle de cube est sur une position non vide (1: I3 ou 2: N2.1)


FAQ

Non. C'est un microscope droit conçu pour l'observation de spécimen montés entre lame et lamelles (d'épaisseur 0.17mm).

Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la version anglaise.




Plateformes Scientifiques CIB               Biologie structurale    |    Cytométrie    |    Microscopie    |    Histologie


  • Aucune étiquette