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Microscope inversé Zeiss Axio-Observer Z1
Pavillon Roger Gaudry, Local R-421
Accès sur demande auprès de la responsable de la Plateforme de microscopie du département de Pharmacologie et Physiologie.
Consultez les
et la
de la
- Applications
- Lumière transmise
- Contraste de phase
- Fluorescence
Sources lumineuses
Lampe LED pour la lumière transmise
Lampe X-Cite 120Q 120 W (350~600nm) pour la fluorescence
Pic d'émission (nm) | Puissance (mW) |
---|---|
334 | 7 |
365 | 45 |
405 | 34 |
436 | 43 |
546 | 37 |
579 | 26 |
Brochure X-Cite 120Q (anglais pdf)
Guide de démarrage rapide X-Cite 120Q (anglais pdf)
Manuel d'utilisateur X-Cite 120Q (anglais pdf)
Comparaison entre les spectres d'émission de lampe au mercure HBO vs X-Cite (anglais) (Source)
Objectifs
2.5x/0.085 Air WD 8.8
- Vide
10x/0.25 Air Ph1 WD 6.5
- Vide
- 20x/0.5 Air Ph2 WD 2.0
- 40x/0.95 Air WD 0.25
Position | Nom | Marque | Nom complet | Identifiant | Grossissement | Ouverture numérique | Immersion | Type | Distance de travail (mm) | Transmittance (% [nm]) | Technique | Épaisseur du couvre-objet (mm) |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
1 | 20x/0.5 Air | Zeiss | 20x/0.50 Ph2 EC Plan-Neofluar M27 | 420351-9910 | 20x | 2.0 | Air | Plan Neofluar | 2.0 | Not Available | BF, PhC, Fluo | 0.17 |
2 | Vide | |||||||||||
3 | 40x/0.95 | Zeiss | 40x/0.95 Plan-Apochromat Corr M27 | 420660-9970 | 40x | 0.95 | Air | Plan ApoChromat | 0.25 | >80% [400-840] | BF, Fluo | 0.13 - 0.21 |
4 | Vide | |||||||||||
5 | 2.5x/0.085 Air | Zeiss | 2.5x/0.085 EC Plan-Neofluar M27 | 420320-9902 | 2.5x | 0.085 | Air | Plan Neofluar | 8.8 | >95% [400-750] | BF, Fluo | 0.17 |
6 | 10x/0.25 Air | Zeiss | 10x/0.25 Ph1 N-Achroplan M27 | 420941-9911 | 10x | 0.25 | Air | AchroPlan | 6.5 | Not available | BF, PhC, Fluo | 0.17 |
BF : Champ clair (Bright-field)
PhC : Contraste de phase
- Cubes de filtres
- DAPI
- GFP
- Rhodamine
- DHE (dihydroethidium)
- Cy5
Position | Nom | Marque | Identifiant | Filtre d'excitation | Miroir dichroïque | Filtre d'émission | Commentaires |
---|---|---|---|---|---|---|---|
1 | DAPI Filter Set 49 | Zeiss | 365/50 [325-375] | 395LP | 445/50 [420-470] | ||
2 | GFP Filter Set 13 | Zeiss | 488013-0000 | 470/20 | 495LP | 517/25 [505-530] | |
3 | Rhodamine Filter Set 43 | Zeiss | 545/25 [533-567] | 570LP | 605/70 [570-640] | ||
4 | DHE | Custom | Custom | 500/50 | 540LP | 580/20 [570-590] | Caractéristiques indéterminées Valeurs supposées |
5 | Cy5 Filter Set 50 | Zeiss | 488050-9901 | 640/30 [625-655] | 660LP | 690/50 | |
6 | Vide |
- Détecteur
- Caméra CCD Zeiss AxioCam MR R3 1388 x 1040 pixels,12-bit, 13 images/s à pleine résolution, taille du capteur 8.9 mm x 6.7 mm 1388 x 1040
- Caméra CCD Zeiss AxioCam MR R3 1388 x 1040 pixels,12-bit, 13 images/s à pleine résolution, taille du capteur 8.9 mm x 6.7 mm 1388 x 1040
- Allumez l’ordinateur (#1)
- Allumez la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
- Appuyez sur le bouton de démarrage du microscope situé à l'arrière gauche (#3)
Si la fluorescence est nécessaire, allumez la lampe X-Cite (#4A) et ouvrir le diaphragme (#4B)
La lampe X-Cite doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa
Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows
Démarrez le logiciel Zen Blue
Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope dans le logiciel. Pour ce faire, suivre les instructions Paramétrage du logiciel.
- Enregistrez vos données
- Fermez le logiciel Zen Blue
- Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
- Éteindre l'ordinateur
Si la fluorescence a été utilisée, éteindre la lampe X-Cite (#4A)
La lampe X-Cite doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa
- Éteindre la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
- Couvrir l’instrument avec la housse de protection
Rappels Importants
- Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
- Laissez le microscope et l’espace de travail propre
- Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
- À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
- Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:
Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation.
Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple.
Attention, cette procédure supprimera tous vos protocoles d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel.
- Si ouvert, fermez le logiciel Zen Blue et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
- Sur le Bureau ouvrez le dossier Documentation
- Double-cliquez sur Zen Settings for Axio-Observer Z1
- Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel Zen Blue
Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair, contraste de phase) et en lumière réfléchie (fluorescence).
Error rendering macro 'viewpdf'
com.atlassian.confluence.macro.MacroExecutionException: com.atlassian.confluence.macro.MacroExecutionException: The viewfile macro is unable to locate the attachment "LightPath_Zeiss_Z1.pdf" on this page
Manuels disponibles version anglaise.
Section disponible dans la version anglaise.
Section disponible dans la version anglaise.
Dépannage
Ce microscope est motorisé pour la majeure partie de ses composants, cependant la source lumineuse X-Cite est manuelle. Il est donc important de vérifier que le diaphragme sur la lampe X-Cite (#4B) est ouvert (position haute).
- Sur la lampe X-Cite
- Tournez le diaphragme de contrôle de l'intensité (#4B) vers le haut
FAQ
Oui. C'est un microscope inversé conçu pour l'observation de spécimen en cultures.
Les objectifs sont optimisés pour observer au travers de plaques multi-puits à fond de verre.
Il est également possible d'observer des échantillons entre lame et lamelles (d'épaisseur 0.17mm).
Oui, mais... Ce microscope possède un module d'incubation permettant le maintien de la température et de l'atmosphère. Cependant, il ne possède pas de module permettant le maintien du plan focal dans le temps (Definite Focus). Il est possible que la mise au point ne soit pas aussi bonne lors de longues experiences.
Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la version anglaise.
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