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idInstrument Tab container
titleZeiss Axio-Imager Z2
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  • Applications

    • Lumière transmise

    • Lumière polarisée

    • Contraste d'interférecence (DIC)

    • Fluorescence

  • Sources lumineuses

    • Lampe halogène 12V 100W pour la lumière transmise

    • Lampe X-Cite exacte 200 W (340~675nm) pour la fluorescence

Tabs Page
idDescription
titleDescription

Microscope

inversé

droit Zeiss Axio-

Observer Z1

Imager Z2

Pavillon Roger GaudryJ-A Bombardier, Local R3223-4210
Tarif d'utilisation Microscope Avancé tier 1 

Instrument octroyé au Dr Pascal Chartrand par la Fondation Canadienne pour l'Innovation (FCI)Accès sur demande auprès de la responsable de la Plateforme de microscopie du département de Biochimie et Médecine Moléculaire.
Consultez les

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et la
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linkTextpolitique d'accès
hrefhttps://biochimie.umontreal.ca/wp-content/uploads/sites/37/2021/10/Reglements.pdf
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de la
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linkTextPlateforme de Microscopie du département de Biochimie et Médecine Moléculaire
hrefhttps://biochimie.umontreal.ca/plateformes-scientifiques-bmm/microscopie/
target
Développer
titleCaractéristiques complètes de la lampe X-Cite exacte


Pic d'émission (nm)

Puissance (mW)

334

7

5

365

45

20

405

34

19

436

43

22

546

37

21

579

26

18

Guide de démarrage rapide X-Cite exacte (anglais pdf)
Guide d'utilisation X-Cite exacte (anglais pdf)
Comparaison entre les spectres d'émission de lampe au mercure HBO vs X-Cite exacte (anglais) (Source)


  • Objectifs

    1. 10x/0.30 Air WD 5.30

    2. 20x/0.80 Air WD 0.61

    3. 40x/0.75 Air WD 0.71

    4. 63x/1.40 huile Huile WD 0.19

    5. 100x/1.30 

      huile

      Huile WD 0.20

    6. 100x/1.40 huile Huile WD 0.17

      Développer
      titleCaractéristiques complètes des objectifs


      Position

      Nom

      Marque

      Nom complet

      Identifiant

      Grossissement

      Ouverture numérique

      Immersion

      Type

      Distance de travail (mm)

      Transmittance

      (% [nm])

      Technique

      Épaisseur du couvre-objet (mm)

      1

      10x/0.30
      Air

      Zeiss

      10x/0.3 DIC I

      EC Plan-Neo Fluar

      M27

      420340-9901-000

      10x

      0.3

      Air

      Plan Neofluar

      5.2

      >90% [480-780]

      BF, DIC, Fluo

      0.17

      2

      20x/0.80
      Air

      Zeiss

      20x/0.8 DIC II

      Plan-Apochromat
      W0.8x1/36"

      440640-9903-000

      20x

      0.8

      Air

      Plan Apochromat

      0.55

      >90% [410-800]

      BF, DIC, Fluo

      0.17

      3


      40x/0.75
      Air


      Zeiss

      40x/0.75 DIC II
      EC Plan-Neofluar
      M27

      420360-9900-000

      40x

      0.75


      Air


      Plan Neofluar

      0.71

      >90% [410-780]

      BF, DIC, Fluo

      0.17

      4

      63x/1.40

      Huile

      Zeiss

      63x/1.4 DIC III

      Plan-Apochromat

      M27

      420782-9900-000

      63x

      1.4



      Remarque
      Huile



      Plan Apochromat

      0.19

      >80% [440-710]

      BF, DIC, Fluo

      0.17

      5

      100x/1.30
      Huile

      Zeiss

      100x/1.3 DIC III
      EC Plan-Neofluar
      M27

      420490-9900-000

      100x

      1.3



      Remarque
      Huile



      Plan Neofluar

      0.20

      >80% [400-820]

      BF, DIC, Fluo

      0.17

      6

      100x/1.40
      Huile

      Zeiss

      100x/1.4 DIC III
      Plan-Apochromat
      M27

      420792-9900-000

      100x

      1.4



      Remarque
      Huile



      Plan Apochromat

      0.17

      >80% [400-820]

      BF, DIC, Fluo

      0.17

      BF : Champ clair (Bright-field)
      PhC : Contraste de phase      DIC: Contraste d'interférence


  • Cubes de filtres

    1. DAPI

    2. GFP

    3. YFP

    4. DsRed/Cy3

    5. TxRed

    6. Cy3.0

    7. Cy3.5

    8. Cy5

    9. Analyseur DIC

    10. Vide

      Développer
      titleCaractéristiques complètes des filtres


      Position

      Nom

      Marque

      Identifiant

      Filtre d'excitation 

      Miroir dichroïque

      Filtre d'émission

      Commentaire



      1

      DAPI

      Filter Set 49

      Zeiss

      488049-9901-000

      365/50

      [340-390]

      395LP

      445/50

      [420-470]




      2

      GFP

      Filter Set 38

      Zeiss

      000000-1031-346

      470/40
      [450-490]

      495LP

      525/50

      [500-550]


      FT 495

      BP 525/50

      3

      YFP

      Filter Set 46

      Zeiss

      000000-1196-681

      500/20

      [490-510]

      515LP

      535/30

      [520-550]




      4

      DsRed

      Filter Set 43

      Zeiss

      000000-1114-101

      545/25

      [533-557]

      570LP

      605/70

      [570-640]

      FT 570

      BP 605/70


      5

      TxRed

      Filter Set 45

      Zeiss

      000000-1114-462

      560/40

      [540-580]

      585LP

      630/75

      [593-667]




      6

      Cy3.0

      Chroma

      SP102v1

      546/11
      [541-551]

      557LP

      567/15

      [560-574]




      7

      Cy3.5

      Chroma

      SP103v1

      581/10
      [576-586]

      593LP

      617/40

      [597-637]




      8

      Cy5 narrow

      Chroma

      49009

      640/30
      [625-655]

      660LP

      690/50

      [665-715]




      9

      Analyseur DIC

      Zeiss








      10

      Vide










    • Tabs Page
    idGuide d'utilisation
    titleGuide d'utilisation
    UI Expand
    expandedtrue
    titleDémarrage

    1. Retirez la housse de protection du microscope

    2. Allumez l'ordinateur (#1)

    3. Allumez la lampe X-Cite exacte sur l'étagère à gauche du microscope (#2)

      Info

      L'affichage de la lampe X-Cite exacte clignotera pendant le chauffage (4 minutes environ) et sera ensuite opérationelle.

      Avertissement

      La lampe X-Cite exacte doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa


    4. Allumez la barre d'alimentation sur l'étagère au dessus de l'ordinateur (#3)

    5. Appuyez sur le bouton de démarrage du microscope situé à l'arrière gauche (#4)

    6. Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows

      Remarque

      Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope AVANT de démarrer le logiciel. Pour ce faire, suivre les instructions Première Utilisation.


    7. Démarrez le logiciel Zen Blue


    UI Expand
    titlePremière Utilisation

    Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation.
    Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple. 

    Remarque

    Attention, cette procédure supprimera tous vos protocoles d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel.

    1. Si ouvert, fermez le logiciel Zen Blue et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)

    2. Sur le Bureau ouvrez le dossier Documentation

    3. Double-cliquez sur Settings for Axio-Imager Z2

    4. Un script s'excutera et une fenêtre noire apparaitra brièvement

    5. Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel Zen Blue


    UI Expand
    titleChargement des échantillons

    Cette procédure permet de mettre le microscope dans une configuration sécuritaire et d'effectuer une calibration de la mise au point. À la fin de cette procédure le microscope sera prêt pour l'acquisition.


    UI Expand
    titleCalibration de la mise au point (Z)

    Sur l’écran tactile du microscope :

    1. Appuyez sur Home>Load Position pour faire descendre la platine dans sa position la plus basse

    2. Appuyez sur Set Work Position pour mémoriser cette position

    3. Si nécessaire, déplacez la mise au point légèrement vers le haut pour supprimer le message « Lower Z limit reached» qui s'affiche sur l'écran tactile

    4. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives>10x pour sélectionner l'objectif 10x

    5. Si demandé, appuyez sur Done pour supprimer l'avertissement de nettoyage de l'objectif à huile

    6. Appuyez sur Home>Microscope>XYZ>Position>Z-Position>Set zero>Auto pour effectuer la calibration de la mise au point

    7. Appuyez sur OK pour lancer la procédure de calibration de la mise au point

    8. Attendre quelques secondes que la calibration soit terminée

    Remarque

    Si calibrée, la mise au point est aux alentours de Z = 11 mm). La valeur de la position en Z est visible sur l'écran tactile Home>Z-Position


    UI Expand
    titlePremière mise au point
    Avertissement
    titleImportant

    Faire d’abord la calibration de la mise au point avant d'effectuer la première mise au point.

    Sur l’écran tactile du microscope :

    1. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives

    2. Appuyez sur 10x pour sélectionner l'objectif 10x

      Info

      L’objectif 10x est le plus sécuritaire car il possède la plus grande distance de travail (5.3 mm). L'échantillon apparaitra parfaitement net bien avant que l'objectif ne s'approche de celui-ci. Il est recommandé de toujours faire la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire. Les objectifs sont para-focaux, faire la mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire vous permettra ensuite de trouver facilement votre échantillon avec un autre objectif.


    3. Appuyez sur Home>Load Position pour faire descendre la platine dans sa position la plus basse

    4. Appuyez sur Set Work Position pour mémoriser cette position

    5. Si nécessaire, déplacez la mise au point légèrement vers le haut pour supprimer le message « Lower Z limit reached» qui s'affiche sur l'écran tactile

    6. Placez la lame de test sur la platine du microscope avec le couvre-objet vers l'objectif

      Remarque
      titleImportant

      Toujours utiliser la lame de test pour effectuer la première mise au point.

       

    7. Si nécessaire, déplacez la platine pour que l'échantillon soit centré sur l'objectif

    Sur l’ordinateur :

    1. Ouvrez le logiciel Zen Blue

    2. Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (GFP, DsRed, DAPI, etc…) pour activer la configuration

    3. Ajustez la mise au point avec la molette principale tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

      Remarque

      Si calibrée, la mise au point est aux alentours de Z = 11 mm). La valeur de la position en Z est visible sur l'écran tactile Home>Z-Position


    4. Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination


    UI Expand
    titleMise au point secondaire


    Avertissement
    titleImportant

    Faire d’abord la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire avant de sélectionner un autre objectif et de poursuivre avec la mise au point secondaire.


    UI Expand
    titleMise au point avec les objectifs à air

    Après avoir effectué la première mise au point, sur l’écran tactile du microscope :

    1. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives

    2. Appuyez sur 20x ou 40x pour sélectionner l'objectif désiré

      Info

      L’objectif 20x est le meilleur objectif à Air car il possède le plus grand nombre de corrections optiques (Plan Apochromat) et la plus grande ouverture numérique (0.8). Il offre une résolution latérale de 420nm à une longueur d'onde de 550nm.


    3. Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

    4. Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !


    UI Expand
    titleMise au point avec les objectifs à l'huile

    Après avoir effectué la première mise au point, sur l’écran tactile du microscope :

    1. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives

    2. Appuyez sur 63x Oil, 100x Oil (1.4) ou 100x Oil (1.4) pour sélectionner l'objectif désiré. Le microscope abaissera automatiquement la platine pour que l'échantillon soit accessible.

      Info

      L'objectif 63x est le meilleur objectif à l'huile car il possède le plus grand nombre de corrections optiques (Plan Apochromat) et la plus grande ouverture numérique (1.4). Il offre une résolution latérale de 240nm à une longueur d'onde de 550nm.


    3. Déposer une goutte d’huile sur votre échantillon

    4. Appuyez sur Done. Le microscope replacera automatiquement l'échantillon à sa position originale.

    Dans le logiciel Zen Blue :

    1. Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (GFP, DsRed, DAPI, etc…) pour activer la configuration

    2. Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

    3. Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination

    4. Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !

    UI Expand
    titleGestion du stockage

    • Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)

    • À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:

    • Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).

    Remarque

    Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:

    UI Expand
    titleFermeture

    1. Enregistrez vos données

    2. Fermez le logiciel Zen Blue

    3. Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:

    4. Si utilisés, nettoyez les objectifs à huile avec du nettoyant et du papier à lentille

    5. Éteindre la barre d'alimentation sur l'étagère au dessus de l'ordinateur (#3)

    6. Éteindre la lampe X-Cite exacte (#2)

      Avertissement

      La lampe X-Cite exacte doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa


    7. Éteindre l'ordinateur

    8. Couvrir l’instrument avec la housse de protection

    Remarque
    titleRappels Importants

    • Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope

    • Laissez le microscope et l’espace de travail propre

    Tabs Page
    idTrajet lumineux
    titleTrajet lumineux

    Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair, DIC) et en lumière réfléchie (fluorescence).

    View file
    nameZeiss_Z2_Lightpath.pdf
    height250


    Tabs Page
    idManuals
    titleManuels

    Manuels disponibles version anglaise.


    Tabs Page
    idLog
    titleLog

    Section disponible dans la version anglaise.


    Tabs Page
    idFiche Technique
    titleFiche Technique

    Section disponible dans la version anglaise.


    Tabs Page
    idDépannage et FAQ
    titleDépannage et FAQ

    Dépannage

    Dépannage
    UI Expand
    expandedtrue
    title
    titleJe ne vois pas de fluorescence !

    Le meilleur moyen de résoudre un problème en Microscopie est de suivre le trajet lumineux. Vous trouverez dans l'onglet Trajet lumineux de cette page, les schémas qui vous permettront de suivre la lumière tout le long de son chemin au travers du microscope. 

    1. Ouvrez le fichier du trajet lumineux

    2. En partant de la source lumineuse et en se dirigeant vers le détecteur, vérifiez qu'il y a effectivement de la lumière après chaque composant du microscope

    FAQ

    UI Expand
    FAQ
    titlePuis-je utiliser ce microscope pour observer des cellules en culture?

    Non. C'est un microscope droit conçu pour l'observation de spécimen entre lame et lamelles (d'épaisseur 0.17mm).

    Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la version anglaise.




    Tabs Container
    idImage de démonstration
    titleZeiss Axio-Imager Z2
    directionhorizontal


    Tabs Page
    idImage de démonstration
    titleImage de démonstration




    Inclure page
    Plateformes:_foot
    Plateformes:_foot


    ...