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idInstrument Tab container
titleZeiss Axio-Imager Z2
directionhorizontal

Guide de démarrage rapide X-Cite exacte (anglais pdf)
Guide d'utilisation X-Cite exacte (anglais pdf)
Comparaison entre les spectres d'émission de lampe au mercure HBO vs X-Cite exacte (anglais) (Source)

Objectifs

  1. 10x/0.30 Air WD 5.30

  2. 20x/0.80 Air WD 0.61

  3. 40x/0.75 Air WD 0.71

  4. 63x/1.40 Huile WD 0.19

  5. 100x/1.30 Huile WD 0.20

  6. 100x/1.40 Huile WD 0.17

Tabs Page
idDescription
titleDescription

Microscope droit Zeiss Axio-Imager Z2

Pavillon J-A Bombardier, Local 3223-0

Accès sur demande auprès de la responsable de la Plateforme de microscopie du département de Biochimie et Médecine Moléculaire.
Consultez les

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iconfalse
linkTexttarifs
hrefhttps://biochimie.umontreal.ca/wp-content/uploads/sites/37/2021/02/Tarifs_2021-22_pour_utilisation_des_plateformes_BMM.pdf
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et la
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linkTextpolitique d'accès
hrefhttps://biochimie.umontreal.ca/wp-content/uploads/sites/37/2021/10/Reglements.pdf
target_blank
de la Plateforme de Microscopie du département de Biochimie et Médecine Moléculaire. 

Tarif d'utilisation Microscope Avancé tier 1 

Instrument octroyé au Dr Pascal Chartrand par la Fondation Canadienne pour l'Innovation (FCI)

  • Applications

    • Lumière transmise

    • Contraste d'interférecence (DIC)

    • Fluorescence

  • Sources lumineuses

  • Objectifs

    1. 10x/0.30 Air WD 5.30

    2. 20x/0.80 Air WD 0.61

    3. 40x/0.75 Air WD 0.71

    4. 63x/1.40 Huile WD 0.19

    5. 100x/1.30 Huile WD 0.20

    6. 100x/1.40 Huile WD 0.17

      Développer
      titleCaractéristiques complètes des objectifs


      Position

      Nom

      Marque

      Nom complet

      Identifiant

      Grossissement

      Ouverture numérique

      Immersion

      Type

      Distance de travail (mm)

      Transmittance

      (% [nm])

      Technique

      Épaisseur du couvre-objet (mm)

      1

      10x/0.30
      Air

      Zeiss

      10x/0.3 DIC I

      EC Plan-Neo Fluar

      M27

      420340-9901-000

      10x

      0.3

      Air

      Plan Neofluar

      5.2

      >90% [480-780]

      BF, DIC, Fluo

      0.17

      2

      20x/0.80
      Air

      Zeiss

      20x/0.8 DIC II

      Plan-Apochromat
      W0.8x1/36"

      440640-9903-000

      20x

      0.8

      Air

      Plan Apochromat

      0.55

      >90% [410-800]

      BF, DIC, Fluo

      0.17

      3


      40x/0.75
      Air


      Zeiss

      40x/0.75 DIC II
      EC Plan-Neofluar
      M27

      420360-9900-000

      40x

      0.75


      Air


      Plan Neofluar

      0.71

      >90% [410

  • Applications
    • Lumière transmise
    • Contraste d'interférecence (DIC)
    • Fluorescence

  • Sources lumineuses

  • Lampe halogène 12V 100W pour la lumière transmise

    • Lampe X-Cite exacte 200 W (340~675nm) pour la fluorescence

Développer
titleCaractéristiques complètes de la lampe X-Cite exacte
Pic d'émission (nm)Puissance (mW)
3345
36520
40519
43622
54621
57918
Développer
titleCaractéristiques complètes des objectifs
PositionNomMarqueNom completIdentifiantGrossissementOuverture numériqueImmersionTypeDistance de travail (mm)Transmittance
(% [nm])		TechniqueÉpaisseur du couvre-objet (mm)
110x/0.30
Air		Zeiss10x/0.3 DIC I
EC Plan-Neo Fluar
M27		420340-9901-00010x0.3AirPlan Neofluar5.2>90% [480

-780]

BF, DIC, Fluo

0.17

2

4

20x63x/01.8040Air

Huile

Zeiss

20x

63x/

0

1.

8 

4 DIC

II

III

Plan-Apochromat

W0.8x1/36"

M27

420782-9900

440640-9903

-000

20x

63x

01.84



Remarque
Air
Huile



Plan Apochromat

0.

55

19

>90%

>80% [

410

440-

800

710]

BF, DIC, Fluo

0.17

3

5

40x

100x/

0

1.

75

30

Air

Huile

Zeiss

40x

100x/

0

1.

75 

3 DIC

II

III
EC Plan-Neofluar
M27

420360

420490-9900-000

40x100x

0

1.

75

3



Remarque
Air
Huile



Plan Neofluar

0.

71

20

>90%

>80% [

410

400-

780

820]

BF, DIC, Fluo

0.17

4

6

63x

100x/1.40
Huile

Zeiss

63x

100x/1.

4 

4 DIC III
Plan-Apochromat
M27

420782

420792-9900-000

63x100x

1.4



Remarque
Huile



Plan Apochromat

0.

19

17

>80% [

440

400-

710

820]

BF, DIC, Fluo

0.17

5100x/1.30
Huile
Zeiss100x/1.3 DIC III
EC Plan-Neofluar
M27
420490-9900-000100x1.3
Remarque
Huile
Plan Neofluar0.20>80% [400-820]BF, DIC, Fluo0.176100x/1.40
Huile
Zeiss100x/1.4 DIC III
Plan-Apochromat
M27
420792-9900-000100x1.4
Remarque
Huile
Plan Apochromat

0.17

>80% [400-820]BF, DIC, Fluo0.17

BF : Champ clair (Bright-field)
DIC: Contraste d'interférence

Cubes de filtres
  • DAPI
  • GFP
  • YFP
  • DsRed
  • TxRed
  • Cy3.0
  • Cy3.5
  • Cy5
  • Analyseur DIC

    • Vide

    Développer
    titleCaractéristiques complètes des filtres
    PositionNomMarqueIdentifiantFiltre d'excitation Miroir dichroïqueFiltre d'émissionCommentaire1DAPI
    Filter Set 49Zeiss

    488049-9901-000

    365/50
    [340-390]395LP445/50
    [420-470]2GFP
    Filter Set 38Zeiss000000-1031-346

    470/40
    [450-490]

    495LP

    525/50
    [500-550]FT 495BP 525/503YFP
    Filter Set 46Zeiss

    000000-1196-681

    500/20
    [490-510]515LP535/30
    [520-550]4DsRed
    Filter Set 43Zeiss

    000000-1114-101

    545/25
    [533-557]570LP605/70
    [570-640]FT 570BP 605/705TxRed
    Filter Set 45Zeiss000000-1114-462560/40
    [540-580]585LP630/75
    [593-667]6Cy3.0
    Chroma

    SP102v1

    546/11
    [541-551]

    557LP567/15
    [560-574]7Cy3.5
    ChromaSP103v1

    581/10
    [576-586]

    593LP617/40
    [597-637]8Cy5 narrowChroma49009

    640/30
    [625-655]

    660LP690/50
    [665-715]9Analyseur DICZeiss10Vide
    • Détecteur
      • Caméra monochrome sCMOS Photometrics Prime 2048 x 2048 pixels, 16-bit, 30 images/s à pleine résolution

    1. BF : Champ clair (Bright-field)
      DIC: Contraste d'interférence


  • Cubes de filtres

    1. DAPI

    2. GFP

    3. YFP

    4. DsRed/Cy3

    5. TxRed

    6. Cy3.0

    7. Cy3.5

    8. Cy5

    9. Analyseur DIC

    10. Vide

      Développer
      titleCaractéristiques complètes des filtres


      Position

      Nom

      Marque

      Identifiant

      Filtre d'excitation 

      Miroir dichroïque

      Filtre d'émission

      Commentaire



      1

      DAPI

      Filter Set 49

      Zeiss

      488049-9901-000

      365/50

      [340-390]

      395LP

      445/50

      [420-470]




      2

      GFP

      Filter Set 38

      Zeiss

      000000-1031-346

      470/40
      [450-490]

      495LP

      525/50

      [500-550]


      FT 495

      BP 525/50

      3

      YFP

      Filter Set 46

      Zeiss

      000000-1196-681

      500/20

      [490-510]

      515LP

      535/30

      [520-550]




      4

      DsRed

      Filter Set 43

      Zeiss

      000000-1114-101

      545/25

      [533-557]

      570LP

      605/70

      [570-640]

      FT 570

      BP 605/70


      5

      TxRed

      Filter Set 45

      Zeiss

      000000-1114-462

      560/40

      [540-580]

      585LP

      630/75

      [593-667]




      6

      Cy3.0

      Chroma

      SP102v1

      546/11
      [541-551]

      557LP

      567/15

      [560-574]




      7

      Cy3.5

      Chroma

      SP103v1

      581/10
      [576-586]

      593LP

      617/40

      [597-637]




      8

      Cy5 narrow

      Chroma

      49009

      640/30
      [625-655]

      660LP

      690/50

      [665-715]




      9

      Analyseur DIC

      Zeiss








      10

      Vide










  • Enregistrez vos données
  • Fermez le logiciel Zen Blue
  • Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
  • Éteindre l'ordinateur
  • Éteindre la caméra Prime (#4)
  • Éteindre l’alimentation du microscope (#2)

    • Si la fluorescence a été utilisée, éteindre la lampe X-Cite exacte (#1)

    Tabs Page
    idGuide d'utilisation
    titleGuide d'utilisation
    UI Expand
    expandedtrue
    titleDémarrage

    1. Retirez la housse de protection du microscope

    2. Allumez l'ordinateur (#1)

    3. Allumez la lampe X-Cite exacte sur l'étagère à gauche du microscope (#2)

      Info

      L'affichage de la lampe X-Cite exacte clignotera pendant le chauffage (4 minutes environ) et sera ensuite opérationelle.

      Avertissement

      La lampe X-Cite exacte doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa


    4. Allumez la barre d'alimentation sur l'étagère au dessus de l'ordinateur (#3)

    5. Appuyez sur le bouton de démarrage du microscope situé à l'arrière gauche (#4)

    6. Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows

      Remarque

      Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope AVANT de démarrer le logiciel. Pour ce faire, suivre les instructions Première Utilisation.


    7. Démarrez le logiciel Zen Blue


    UI Expand
    titlePremière Utilisation

    Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation.
    Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple. 

    Remarque

    Attention, cette procédure supprimera tous vos protocoles d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel.

    1. Si ouvert, fermez le logiciel Zen Blue et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)

    2. Sur le Bureau ouvrez le dossier Documentation

    3. Double-cliquez sur Settings for Axio-Imager Z2

    4. Un script s'excutera et une fenêtre noire apparaitra brièvement

    5. Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel Zen Blue


    UI Expand
    titleChargement des échantillons

    Cette procédure permet de mettre le microscope dans une configuration sécuritaire et d'effectuer une calibration de la mise au point. À la fin de cette procédure le microscope sera prêt pour l'acquisition.


    UI Expand
    titleCalibration de la mise au point (Z)

    Sur l’écran tactile du microscope :

    1. Appuyez sur Home>Load Position pour faire descendre la platine dans sa position la plus basse

    2. Appuyez sur Set Work Position pour mémoriser cette position

    3. Si nécessaire, déplacez la mise au point légèrement vers le haut pour supprimer le message « Lower Z limit reached» qui s'affiche sur l'écran tactile

    4. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives>10x pour sélectionner l'objectif 10x

    5. Si demandé, appuyez sur Done pour supprimer l'avertissement de nettoyage de l'objectif à huile

    6. Appuyez sur Home>Microscope>XYZ>Position>Z-Position>Set zero>Auto pour effectuer la calibration de la mise au point

    7. Appuyez sur OK pour lancer la procédure de calibration de la mise au point

    8. Attendre quelques secondes que la calibration soit terminée

    Remarque

    Si calibrée, la mise au point est aux alentours de Z = 11 mm). La valeur de la position en Z est visible sur l'écran tactile Home>Z-Position


    UI Expand
    titlePremière mise au point
    Avertissement
    titleImportant

    Faire d’abord la calibration de la mise au point avant d'effectuer la première mise au point.

    Sur l’écran tactile du microscope :

    1. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives

    2. Appuyez sur 10x pour sélectionner l'objectif 10x

      Info

      L’objectif 10x est le plus sécuritaire car il possède la plus grande distance de travail (5.3 mm). L'échantillon apparaitra parfaitement net bien avant que l'objectif ne s'approche de celui-ci. Il est recommandé de toujours faire la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire. Les objectifs sont para-focaux, faire la mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire vous permettra ensuite de trouver facilement votre échantillon avec un autre objectif.


    3. Appuyez sur Home>Load Position pour faire descendre la platine dans sa position la plus basse

    4. Appuyez sur Set Work Position pour mémoriser cette position

    5. Si nécessaire, déplacez la mise au point légèrement vers le haut pour supprimer le message « Lower Z limit reached» qui s'affiche sur l'écran tactile

    6. Placez la lame de test sur la platine du microscope avec le couvre-objet vers l'objectif

      Remarque
      titleImportant

      Toujours utiliser la lame de test pour effectuer la première mise au point.

       

    7. Si nécessaire, déplacez la platine pour que l'échantillon soit centré sur l'objectif

    Sur l’ordinateur :

    1. Ouvrez le logiciel Zen Blue

    2. Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (GFP, DsRed, DAPI, etc…) pour activer la configuration

    3. Ajustez la mise au point avec la molette principale tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

      Remarque

      Si calibrée, la mise au point est aux alentours de Z = 11 mm). La valeur de la position en Z est visible sur l'écran tactile Home>Z-Position


    4. Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination


    UI Expand
    titleMise au point secondaire


    Avertissement
    titleImportant

    Faire d’abord la première

    Tabs Page
    idGuide d'utilisation
    titleGuide d'utilisation

    Si la fluorescence est nécessaire, allumez la lampe X-Cite exacte (#1 à gauche du microscope)

    UI Expand
    expandedtrue
    titleDémarrage
    Info

    L'affichage de la lampe X-Cite exacte clignotera pendant le chauffage (4 minutes environ) et sera ensuite opérationelle.

    Avertissement

    La lampe X-Cite exacte doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa

  • Allumez l'alimentation du microscope (#2 module Power Supply 232 à droite du microscope)

  • Appuyez sur le bouton de démarrage du microscope situé à l'arrière gauche (#3)
  • Allumez la caméra Prime (#4 sur le dessus de la caméra)
  • Allumez l'ordinateur (#5)
  • Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows
    • Démarrez le logiciel Zen Blue
    Info

    Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope dans le logiciel. Pour ce faire, suivre les instructions Paramétrage du logiciel.

    UI Expand
    titleFermeture
    Avertissement

    La lampe X-Cite exacte doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa

  • Couvrir l’instrument avec la housse de protection
    • Remarque
    titleRappels Importants
    • Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
    • Laissez le microscope et l’espace de travail propre
    UI Expand
    titleGestion du stockage
    • Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
    • À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
    • Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
    Remarque

    Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:

    UI Expand
    titleParamétrage du logiciel
    Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation.
    Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple. 
    Remarque

    Attention, cette procédure supprimera tous vos protocoles d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel.

    1. Si ouvert, fermez le logiciel Zen Blue et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
    2. Sur le Bureau ouvrez le dossier Documentation
    3. Double-cliquez sur Zen Settings for Axio-Imager Z2
    4. Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel Zen Blue
    UI Expand
    titleProcédure pour le chargement des échantillons

    Cette procédure permet de mettre le microscope dans une configuration sécuritaire et d'effectuer une calibration de la mise au point. À la fin de cette procédure le microscope sera prêt pour l'acquisition.

    Calibration

    Sur l’écran tactile du microscope :

    1. Appuyez sur Home>Load Position pour faire descendre la platine dans sa position la plus basse
    2. Appuyez sur Set Work Position pour mémoriser cette position
    3. Si nécessaire, déplacez la mise au point légèrement vers le haut pour supprimer le message « Lower Z limit reached» qui s'affiche sur l'écran tactile
    4. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives>10x pour sélectionner l'objectif 10x
    5. Si demandé, appuyez sur Done pour supprimer l'avertissement de nettoyage de l'objectif à huile
    6. Appuyez sur Home>Microscope>XYZ>Position>Z-Position>Set zero>Auto pour effectuer la calibration de la mise au point
    7. Appuyez sur OK pour lancer la procédure de calibration de la mise au point
    8. Attendre quelques secondes que la calibration soit terminée

    Première mise au point

    Sur l’écran tactile du microscope :

  • Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives

    • Appuyez sur 10x pour sélectionner l'objectif 10x

    InfoL’objectif 10x est le plus sécuritaire car il possède la plus grande distance de travail (5.3 mm). L'échantillon apparaitra parfaitement net bien avant que l'objectif ne s'approche de celui-ci. Il est recommandé de toujours faire la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire. Les objectifs sont para-focaux, faire la

    mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire

    vous permettra ensuite de trouver facilement votre échantillon avec

    avant de sélectionner un autre objectif

    .
  • Appuyez sur Home>Load Position pour faire descendre la platine dans sa position la plus basse
  • Appuyez sur Set Work Position pour mémoriser cette position
  • Si nécessaire, déplacez la mise au point légèrement vers le haut pour supprimer le message « Lower Z limit reached» qui s'affiche sur l'écran tactile
  • Placez votre échantillon sur la platine du microscope avec le couvre-objet vers l'objectif

    • Sur l’ordinateur :

    Ouvrez le logiciel Zen Blue

    Info

    Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope dans le logiciel. Pour ce faire, suivre les instructions Paramétrage du logiciel.

    Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (GFP, DsRed, DAPI, etc…) pour activer la configuration
    Info

    Assurez-vous que votre échantillon soit centré sous l'objectif et que la lumière soit bien visible aux oculaires avant de continuer.

    et de poursuivre avec la mise au point secondaire.


    UI Expand
    titleMise au point avec les objectifs à air

    Après avoir effectué la première mise au point, sur l’écran tactile du microscope :

    1. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives

    2. Appuyez sur 20x ou 40x pour sélectionner l'objectif désiré

      Info

      L’objectif 20x est le meilleur objectif à Air car il possède le plus grand nombre de corrections optiques (Plan Apochromat) et la plus grande ouverture numérique (0.8). Il offre une résolution latérale de 420nm à une longueur d'onde de 550nm.


    3. Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires

    Ajustez la mise au point avec la molette principale tout en regardant dans les oculaires

    1. jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

    Remarque

    Si calibrée, la mise au point est aux alentours de Z = 11 mm)  La valeur de la position en Z est visible sur l'écran tactile Home>Z-Position

  • Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination

    1. Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !


    Mise au point secondaire 

    Remarque

    Faire d’abord la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire avant de sélectionner un autre objectif et de poursuivre avec la mise au point secondaire.

    UI Expand
    titleMise au point avec les objectifs à air
    Après avoir effectué la première mise au point, sur
    UI Expand
    titleMise au point avec les objectifs à l'huile

    Après avoir effectué la première mise au point, sur

    l’écran tactile du microscope :

    Appuyez  pour

    1. Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives

    2. Appuyez sur

    20x ou 40x est le

    1. 63x Oil, 100x Oil (1.4) ou 100x Oil (1.4) pour sélectionner l'objectif désiré. Le microscope abaissera automatiquement la platine pour que l'échantillon soit accessible.

      Info
    L’objectif 20x

    1. L'objectif 63x est le meilleur objectif à

    Air

    1. l'huile car il possède le plus grand nombre de corrections optiques (Plan Apochromat) et la plus grande ouverture numérique (

    0

    1. 1.

    8

    1. 4). Il offre une résolution latérale de

    420nm

    1. 240nm à une longueur d'onde de 550nm.

  • Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

    • Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !


    2. Déposer une goutte d’huile sur votre échantillon

    3. Appuyez sur Done. Le microscope replacera automatiquement l'échantillon à sa position originale.

    Dans le logiciel Zen Blue :

    1. Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (GFP, DsRed, DAPI, etc…) pour activer la configuration

    2. Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

    3. Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination

    4. Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !

    UI Expand
    titleGestion du stockage

    • Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)

    • À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:

    • Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).

    Remarque

    Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:

    UI Expand
    titleFermeture

    1. Enregistrez vos données

    2. Fermez le logiciel Zen Blue

    3. Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:

    4. Si utilisés, nettoyez les objectifs à huile avec du nettoyant et du papier à lentille

    5. Éteindre la barre d'alimentation sur l'étagère au dessus de l'ordinateur (#3)

    6. Éteindre la lampe X-Cite exacte (#2)

      Avertissement

      La lampe X-Cite exacte doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa


    7. Éteindre l'ordinateur

    8. Couvrir l’instrument avec la housse de protection

    Remarque
    titleRappels Importants

    • Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope

    • Laissez le microscope et l’espace de travail propre

    UI Expand
    titleMise au point avec les objectifs à l'huile

    Après avoir effectué la première mise au point, sur l’écran tactile du microscope :

  • Appuyez sur Home>Microscope>Turret>Objectives

    • Appuyez sur 63x Oil, 100x Oil (1.3) ou 100x Oil (1.4) pour sélectionner l'objectif désiré. Le microscope abaissera automatiquement la platine pour que l'échantillon soit accessible.

    Info

    L'objectif 63x est le meilleur objectif à l'huile car il possède le plus grand nombre de corrections optiques (Plan Apochromat) et la plus grande ouverture numérique (1.4). Il offre une résolution latérale de 240nm à une longueur d'onde de 550nm.

  • Déposer une goutte d’huile sur votre échantillon
  • Appuyez sur Done. Le microscope replacera automatiquement l'échantillon à sa position originale.

    • Dans le logiciel Zen Blue :

    1. Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (GFP, DsRed, DAPI, etc…) pour activer la configuration
    2. Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
    3. Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination
    Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !

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    idTrajet lumineux
    titleTrajet lumineux

    Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair, DIC) et en lumière réfléchie (fluorescence).

    PDFview-file
    nameLightPathZeiss_Zeiss-Z2_Lightpath.pdf
    height250


    Tabs Page
    idManuals
    titleManuels

    Manuels disponibles version anglaise.


    Tabs Page
    idLog
    titleLog

    Section disponible dans la version anglaise.


    Tabs Page
    idFiche Technique
    titleFiche Technique

    Section disponible dans la version anglaise.


    Tabs Page
    idDépannage et FAQ
    titleDépannage et FAQ

    Dépannage

    UI Expand
    titleJe ne vois pas de fluorescence !

    Le meilleur moyen de résoudre un problème en Microscopie est de suivre le trajet lumineux. Vous trouverez dans l'onglet Trajet lumineux de cette page, les schémas qui vous permettront de suivre la lumière tout le long de son chemin au travers du microscope. 

    1. Ouvrez le fichier du trajet lumineux

    2. En partant de la source lumineuse et en se dirigeant vers le détecteur, vérifiez qu'il y a effectivement de la lumière après chaque composant du microscope

    FAQ

    UI Expand
    titlePuis-je utiliser ce microscope pour observer des cellules en culture?

    Non. C'est un microscope droit conçu pour l'observation de spécimen entre lame et lamelles (d'épaisseur 0.17mm).

    Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la la version anglaise.




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    idImage de démonstration
    titleZeiss Axio-Imager Z2
    directionhorizontal


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    idImage de démonstration
    titleImage de démonstration




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    Plateformes:_foot
    Plateformes:_foot


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