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id | Description |
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title | Description |
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| Microscope droit Olympus BX63Pavillon P-G Desmarais, Local 5308-2 Tarif d'utilisation Microscope simpleAvancé tier 1 Instrument octroyé au Dre Marina Martinez par la Fondation Canadienne pour l'Innovation (FCI). - Applications
- Lumière transmise
- Contraste de phase
- Lumière polarisée. DIC
- Fluorescence
- Caméra couleur
Sources lumineuses
Développer |
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title | Caractéristiques complètes de la X-Cite NOVEM XT910 complete specifications |
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Source | Excitation wavelengths |
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Pic d'émission Puissance | Compatible fluorophores | Nominal power (mW) |
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395404303515 | 510 | 20 | 550 | 20 | 580 | 20 | 640 | 20 | 730 | 10 | Manuel Lumencor SOLA (anglais).pdf Spécifications Lumencor SOLA (anglais).pdf
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| FITC, GFP |
| 500-600 | - [500-600] |
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| 509/22 [498-520] | YFP |
| 554/23 [542-565] | TRITC |
| 578/21 [567-588] | mCherry |
| 635 |
| Cy5
|
| 735 |
| Cy7 |
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Filtres recommandés Lumencor SOLA (anglais) |
Objectifs 4x/0.16 Air WD TBD16 10x/0.4 Air WD TBD3.1 - 20x/0.75 Air WD TBD0.6
40x/0.95 Air WD TBD0.18 60x/1.35 Huile WD TBD0.15 - 100x/1.4 Huile WD TBD00.213
- Vide
Développer |
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title | Caractéristiques complètes des objectifsObjectives complete specifications |
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Position | Nom | Marque | Nom complet | Identifiant | Ouverture numérique | Immersion | Distance de travail (mm) | Transmittance (% [nm]) | Technique | Épaisseur du couvre-objet (mm) |
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1 | 4x/0.16 Air | Olympus | 4x/0.16 Air UPlanSApo | | 0.16 | Air | 16 | TBDTBD Image Added
| TBD | 3.1 | ~90% at 550nm
Image Added | BF, Pol, DIC, Fluo |
TBD | TBD | TBD | 0.17 | 3 | | Olympus | 20x/0.75 Air UPlanSApo | | 0.75 | |
TBD | TBD | 0.6 | >90% at 550nm
Image Added | BF, Pol, DIC, Fluo | TBD | 0.17 | 4 | 40x/0.95 Air | Olympus | 40x/0.95 Air UPlanSApo | | 0.95 | Air |
TBD | TBD | TBD | Ajustable | 0.18 | ~90% at 550nm
Image Added | BF, Pol, DIC, Fluo | Adjustable 0.11-0.23 | 5 | 60x/1.35 Huile | Olympus | 60x/1.35 | Oil Huile | TBD | TBD | TBD | 0.15 | ~90% at 550nm
Image Added | BF, Pol, DIC, Fluo | 0.17 | 6 | | Olympus | 100x/1.4 | Oil Huile | TBD | TBD | TBD | 0.13 | ~90% at 550nm
Image Added | BF, Pol, DIC, Fluo | 0.17 | 7 | |
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BF: Champ clair ( Bright-field) Pol: Lumière polarisée PhC: Contraste de phasePolarized light DIC: Differential interference contrast Fluo: Fluorescence |
- Cubes de filtres
- Vide
- DAPI
- FITC
- TRITC
- TxRed
- mCherry
- DAPI/FITC/TRITC/Cy5/Cy7Vide
- Vide
- u-FDI CT
Développer |
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title | Caractéristiques complètes des filtresFilters complete specifications |
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NomMarqueIdentifiant | Filtre d'excitation | Miroir dichroïque | Filtre d'émission | Commentaire | 1 | DAPI/Hoechst/AMCA | Chroma | Cube set 31000v2 | 350/50x [325-375] | 400LP | 460/50m [435-485] | 2 | FITC/EGFP | Chroma | Cube set 41001 | 480/40x [460-500] | 505LP | 535/50m [510-560] | 3 | TRITC/Rhodamine | Chroma | Cube set 41002c | 545/30x [530-560] | 570LP | 620/60m [590-650] | 4 | Texas Red | Chroma | Cube set 41004 | 560/55x [532-588] | 595LP | 645/75m [607-682] | 5 | Vide | 6 | Vide | ID | Excitation Filter | Dichroic mirror | Emission Filter | Comments |
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1 | Empty |
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| 2 | DAPI | Olympus | U-FUNA | 360-370 | 410LP | 420-460 | Image Added | 3 | FITC | Olympus | U-FBNA | 470-495 | 505LP | 510-550 | Image Added | 4 | TRITC | Olympus | U-FGWA | 530-550 | 570LP | 575-625 | Image Added | 5 | mCherry | Olympus | U-FYW | 540-585 | 595LP | 600LP | Image Added | 6 | DAPI/FITC/TRITC/Cy5/Cy7 |
| LED DA/ FI/TR/CY5/C Y7-5X-A-000 | 5 filters within the Novem FF01-387/11 FF02-485/20 FF01-560/25 FF01-650/13 FF01-740/13
| FF408/504/581/667/762-Di01 | FF01-440/521/607/694/809 |
| 7 | Empty |
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| 8 | DIC Analyzer | Olympus | U-FDICT DIC | - | - | - | DIC Analyzer |
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- Détecteur
- Olympus DP80 double détecteur (couleur et monochrome) camera CCD, 6.45 x 6.45 um pixel size,15 images/s à résolution maximale, 55% QE at 550nm
Mode couleur 4080 x 3072 pixels, 24-bit Mode Monochrome 1360 x 1024 pixels, 14-bit Olympus_DP80 Camera_User Guide-1.pdf Détecteur- Caméra couleur Olympus DP80 x pixels, 14-bit,
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id | Guide d'utilisation |
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title | Guide d'utilisation |
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UI Expand |
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expanded | true |
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title | Démarrage |
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| - Retirez la housse de protection du microscope
- Allumez l’ordinateur (#1)
- Allumez la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
Allumez l'ecran tactile du microscope (l’interrupteur est à sur le côté droit du microscope (#3) Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows
Info |
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Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope dans le logiciel. Pour ce faire, suivre les instructions Première Utilisation. |
Démarrez le logiciel CellSens Dimension
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UI Expand |
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title | Première Utilisation |
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| Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation. Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple. Remarque |
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Attention, cette procédure supprimera tous vos protocoles d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel. |
- Si ouvert, fermez le logiciel CellSens Dimension et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
- Sur le Bureau ouvrez le dossier Documentation
- Double-cliquez sur Settings for BX-63
- Un script s'excutera et une fenêtre noire apparaitra brièvement
- Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel CellSens Dimension
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UI Expand |
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title | Procédure pour le chargement des échantillons |
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| Cette procédure permet de mettre le microscope dans une configuration sécuritaire et d'effectuer une calibration de la mise au point. À la fin de cette procédure le microscope sera prêt pour l'acquisition.
UI Expand |
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title | Première mise au point |
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| Sur l’écran tactile du microscope : - Appuyez sur Full Operation
Appuyez sur 4x pour sélectionner l'objectif 4x
Info |
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L’objectif 4xest 4x est le plus sécuritaire car il possède la plus grande distance de travail (5.3 16 mm). L'échantillon apparaitra parfaitement net bien avant que l'objectif ne s'approche de celui-ci. Il est recommandé de toujours faire la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire. Les objectifs sont para-focaux, faire la mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire vous permettra ensuite de trouver facilement votre échantillon avec un autre objectif. |
- Appuyez sur Escape pour faire monter les objectifs dans leur position la plus haute
Placez la lame de test sur la platine du microscope avec le couvre-objet vers l'objectif
Remarque |
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| Toujours utiliser la lame de test pour effectuer la première mise au point. |
- Si nécessaire, déplacez la platine pour que l'échantillon soit centré sur l'objectif
Sur l’ordinateur : Ouvrez le logiciel CellSens Dimension - Attendre l'ouverture du logiciel (oui c'est long...)
En bas à droite de la fenêtre, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (DAPI, FITC, TRITC ou mCherry) pour activer la configuration Ajustez la mise au point avec la molette principale tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette Remarque |
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La mise au point est aux alentours de Z = 19000 um). La valeur de la position en Z est visible sur l'écran tactile. |
- Dans l’onglet Locate, sélectionnez En bas à droite de la fenêtre, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination
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UI Expand |
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title | Mise au point secondaire |
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Avertissement |
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| Faire d’abord la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire avant de sélectionner un autre objectif et de poursuivre avec la mise au point secondaire. |
UI Expand |
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title | Mise au point avec les objectifs à air |
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| Après avoir effectué la première mise au point, sur l’écran tactile du microscope : Appuyez sur 10x, 20x ou 40x pour sélectionner l'objectif désiré Info |
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L’objectif 40x est le meilleur objectif à Air car il possède le plus grand nombre de corrections optiques (Plan Apochromat) et la plus grande ouverture numérique (0.95). Il offre une résolution latérale de 420nm à une longueur d'onde de 550nm. |
- En bas à droite de la fenêtre, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (DAPI, FITC, TRITC ou mCherry) pour activer la configuration
Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette - Sélectionnez Off pour éteindre l'illumination
- Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !
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UI Expand |
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title | Mise au point avec les objectifs à l'huile |
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| Après avoir effectué la première mise au point, sur l’écran tactile du microscope : Appuyez sur 60x Oil (1.35), 100x Oil (1.4) pour sélectionner l'objectif désiré. Le microscope relèvera automatiquement les objectifs pour que l'échantillon soit accessible. Info |
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L'objectif 100x est le meilleur objectif à l'huile car il possède le plus grand nombre de corrections optiques (Plan Apochromat) et la plus grande ouverture numérique (1.4). Il offre une résolution latérale de 240nm à une longueur d'onde de 550nm. |
- Déposer une goutte d’huile sur votre échantillon
Dans le logiciel CellSens Dimension : - Cliquez sur OK
- En bas à droite de la fenêtre, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (DAPI, FITC, TRITC ou mCherry) pour activer la configuration
- Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
- Sélectionnez Sélectionnez Off pour éteindre l'illumination
- Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !
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UI Expand |
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| - Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
- À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
- Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
Remarque |
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Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C: |
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UI Expand |
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| - Enregistrez vos données
- Fermez le logiciel CellSens Dimension
- Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
- Éteindre l'ordinateur
- Si utilisé, nettoyez les objectifs à huile avec du nettoyant et du papier à lentille
- Éteindre la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
- Couvrir l’instrument avec la housse de protection
Remarque |
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| - Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
- Laissez le microscope et l’espace de travail propre
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id | Trajet lumineux |
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title | Trajet lumineux |
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| Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair, contraste de phase et lumière polarisée) et en lumière réfléchie (fluorescence).viewpdf
LightPath_Nikon E600Olympus_BX63_Lightpath.pdf | height | 250 |
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| Manuels disponibles version anglaise.
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id | Fiche Technique |
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title | Fiche Technique |
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| Section disponible dans la version anglaise.
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id | Dépannage et FAQ |
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title | Dépannage et FAQ |
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| Dépannage UI Expand |
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title | Le logiciel NIS-Elements affiche un message d'erreur: Camera Driver...microscope ne s'allume pas, que dois-je faire? |
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| Veuillez vous assurer que l’écran tactile du microscope est allumé. L'interrupteur n'est pas facilement accessible et se situe à l'arrière à droite de l'écran tactile. Ceci peut survenir lorsque le logiciel NIS-Elements ne parvient pas à établir la connexion avec la caméra par exemple lorsque la caméra n'est pas allumée. Fermez le logiciel NIS-ElementsAllumez la caméra (la multiprise du microscope et l'interrupteur sur le dessus de la caméra)Vérifiez la connexion USB entre la caméra et l'ordinateurAllumez le logiciel NIS-Elements |
FAQ UI Expand |
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title | Puis-je utiliser ce microscope pour observer des cellules en culture? |
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| Non. C'est un microscope droit conçu pour l'observation de spécimen montés entre lame et lamelles (d'épaisseur 0.17mm). |
Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la version anglaise. |
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