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idInstrument Tab container
titleZeiss Axio-Imager Z2
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la Plateforme de Microscopie du département de Biochimie et Médecine Moléculaire_blank. 

  • Applications
    • Lumière transmise
    • Contraste d'interférecence (DIC)
    • Fluorescence

  • Sources lumineuses

    • Lampe halogène 12V 100W pour la lumière transmise

    • Lampe X-Cite exacte 200 W (340~675nm) pour la fluorescence

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idDescription
titleDescription


Microscope droit Zeiss Axio-Imager Z2

Pavillon Roger Gaudry, Local B-301-1


Accès sur demande auprès de la responsable de la Plateforme de microscopie du département de Biochimie et Médecine Moléculaire.
Consultez les

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hrefhttps://biochimie.umontreal.ca/wp-content/uploads/sites/37/2021/02/Tarifs_2021-22_pour_utilisation_des_plateformes_BMM.pdf
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et la
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linkTextpolitique d'accès
hrefhttps://biochimie.umontreal.ca/wp-content/uploads/sites/37/2021/10/Reglements.pdf
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de la
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hrefhttps://biochimie.umontreal.ca/plateformes-scientifiques-bmm/microscopie/
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Développer
titleCaractéristiques complètes de la lampe X-Cite exacte


Pic d'émission (nm)Puissance (mW)
3347
36545
40534
43643
54637
57926

Guide de démarrage rapide X-Cite exacte (anglais pdf)
Guide d'utilisation X-Cite exacte (anglais pdf)
Comparaison entre les spectres d'émission de lampe au mercure HBO vs X-Cite exacte (anglais) (Source)


  • Objectifs

    1. 10x/0.30 Air WD 5.30

    2. 20x/0.80 Air WD 0.61

    3. 40x/0.75 Air WD 0.71

    4. 63x/1.40 huile WD 0.19

    5. 100x/1.30 huile WD 0.20

    6. 100x/1.40 huile WD 0.17

      Développer
      titleCaractéristiques complètes des objectifs


      PositionNomMarqueNom completIdentifiantGrossissementOuverture numériqueImmersionTypeDistance de travail (mm)Transmittance
      (% [nm])      		TechniqueÉpaisseur du couvre-objet (mm)
      110x/0.30
      Air      		Zeiss10x/0.3 DIC I
      EC Plan-Neo Fluar
      M27      		420340-9901-00010x0.3AirPlan Neofluar5.2>90% [480-780]BF, DIC, Fluo0.17
      2

      20x/0.80
      Air

      		Zeiss20x/0.8 DIC II
      Plan-Apochromat
      W0.8x1/36"      		440640-9903-00020x

      0.8

      Air

      		Plan Apochromat0.55>90% [410-800]BF, DIC, Fluo0.17
      3

      40x/0.75
      Air

      		Zeiss40x/0.75 DIC II
      EC Plan-Neofluar
      M27      		420360-9900-000

      40x

      		0.75

      Air

      		Plan Neofluar0.71>90% [410-780]BF, DIC, Fluo

      0.17

      463x/1.40
      Huile      		Zeiss63x/1.4 DIC III
      Plan-Apochromat
      M27      		420782-9900-000

      63x

      1.4


      Remarque
      Huile


      		Plan Apochromat0.19>80% [440-710]BF, DIC, Fluo0.17
      5100x/1.30
      Huile
      		Zeiss100x/1.3 DIC III
      EC Plan-Neofluar
      M27
      		420490-9900-000100x1.3


      Remarque
      Huile


      		Plan Neofluar0.20>80% [400-820]BF, DIC, Fluo0.17
      6100x/1.40
      Huile
      		Zeiss100x/1.4 DIC III
      Plan-Apochromat
      M27
      		420792-9900-000100x1.4


      Remarque
      Huile


      		Plan Apochromat

      0.17

      		>80% [400-820]BF, DIC, Fluo0.17

      BF : Champ clair (Bright-field)
      DIC: Contraste d'interférence


  • Cubes de filtres
    1. DAPI
    2. GFP
    3. YFP
    4. DsRed
    5. TxRed
    6. Cy3.0
    7. Cy3.5
    8. Cy5
    9. Analyseur DIC

    10. Vide

      Développer
      titleCaractéristiques complètes des filtres


      PositionNomMarqueIdentifiantFiltre d'excitation Miroir dichroïqueFiltre d'émissionCommentaire

      1DAPI
      Filter Set 49      		Zeiss

      488049-9901-000

      		365/50
      [340-390]      		395LP445/50
      [420-470]


      2GFP
      Filter Set 38      		Zeiss000000-1031-346

      470/40
      [450-490]

      495LP

      		525/50
      [500-550]
      		FT 495BP 525/50
      3YFP
      Filter Set 46      		Zeiss

      000000-1196-681

      		500/20
      [490-510]      		515LP535/30
      [520-550]


      4DsRed
      Filter Set 43      		Zeiss

      000000-1114-101

      		545/25
      [533-557]      		570LP605/70
      [570-640]      		FT 570BP 605/70
      5TxRed
      Filter Set 45      		Zeiss000000-1114-462560/40
      [540-580]      		585LP630/75
      [593-667]


      6Cy3.0

      		Chroma

      SP102v1

      546/11
      [541-551]

      		557LP567/15
      [560-574]


      7Cy3.5

      		ChromaSP103v1

      581/10
      [576-586]

      		593LP617/40
      [597-637]


      8Cy5 narrowChroma49009

      640/30
      [625-655]

      		660LP690/50
      [665-715]


      9Analyseur DICZeiss






      10Vide







      • Détecteur
        • Caméra monochrome sCMOS Photometrics Prime 2048 x 2048 pixels, 16-bit, 30 images/s à pleine résolution






    • Tabs Page
    idGuide d'utilisation
    titleGuide d'utilisation


    UI Expand
    expandedtrue
    titleDémarrage

    1. Si la fluorescence est nécessaire, allumez la lampe X-Cite exacte (#1 à gauche du microscope)

      Avertissement

      La lampe X-Cite exacte doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa


    2. Allumez l'almentation du microscope (#2 module 232 à droite du microscope)

    3. Appuyez sur le bouton de démarrage du microscope situé à l'arrière gauche (#3)
    4. Allumez la caméra Prime (#4 sur le dessus de la caméra)
    5. Allumez l'ordinateur (#5)
    6. Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows

    7. Démarrez le logiciel Zen Blue

      Info

      Lors de la première utilisation il est nécessaire d’importer les paramètres du microscope dans le logiciel. Pour ce faire, suivre les instructions Paramétrage du logiciel.



    UI Expand
    titleFermeture
    1. Enregistrez vos données
    2. Fermez le logiciel Zen Blue
    3. Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
    4. Éteindre l'ordinateur
    5. Éteindre la caméra Prime (#4)
    6. Éteindre l’alimentation du microscope (#2)

    7. Si la fluorescence a été utilisée, éteindre la lampe X-Cite exacte (#1)

      Avertissement

      La lampe X-Cite exacte doit être allumée pendant au moins 30 minutes avant d’être éteinte et vice-versa


    8. Couvrir l’instrument avec la housse de protection
    Remarque
    titleRappels Importants
    • Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
    • Laissez le microscope et l’espace de travail propre



    UI Expand
    titleGestion du stockage
    • Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
    • À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
    • Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
    Remarque

    Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:



    UI Expand
    titleParamétrage du logiciel

    Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation.
    Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple. 

    Remarque

    Attention, cette procédure supprimera tous vos protocoles d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel.

    1. Si ouvert, fermez le logiciel Zen Blue et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
    2. Sur le Bureau ouvrez le dossier Documentation
    3. Double-cliquez sur Zen Settings for Axio-Imager Z2
    4. Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel Zen Blue



    Tabs Page
    idTrajet lumineux
    titleTrajet lumineux


    Les schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair, DIC) et en lumière réfléchie (fluorescence).

    PDF
    nameLightPath_Zeiss-Z2.pdf


    Tabs Page
    idManuals
    titleManuels


    Manuels disponibles version anglaise.


    Tabs Page
    idLog
    titleLog


    Section disponible dans la version anglaise.


    Tabs Page
    idFiche Technique
    titleFiche Technique


    Section disponible dans la version anglaise.


    Tabs Page
    idDépannage et FAQ
    titleDépannage et FAQ


    Dépannage

    UI Expand
    titleJe ne vois pas de fluorescence !

    Le meilleur moyen de résoudre un problème en Microscopie est de suivre le trajet lumineux.
    À cet effet, dans l'onglet Trajet lumineux de cette page, vous trouverez les schémas qui vous permettront de suivre la lumière tout le long de son chemin au travers du microscope. 

    1. Ouvrez le fichier du trajet lumineux
    2. En partant de la source lumineuse et en se dirigeant vers le détecteur, vérifiez qu'il y a effectivement de la lumière après chaque composant du microscope


    FAQ

    UI Expand
    titlePuis-je utiliser ce microscope pour observer des cellules en culture?

    Non. C'est un microscope droit conçu pour l'observation de spécimen entre lame et lamelles (d'épaisseur 0.17mm).


    Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la version anglaise.




    Tabs Container
    idImage de démonstration
    titleZeiss Axio-Imager Z2
    directionhorizontal


    Tabs Page
    idImage de démonstration
    titleImage de démonstration




    Inclure page
    Plateformes:_foot
    Plateformes:_foot