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titleEnglish
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Nikon

Eclipse E600directionhorizontal Tabs Page
idDescription
titleDescription
Microscope droit Nikon Eclipse E-600

E600 (en)

Microscope Nikon E600

Pavillon Roger Gaudry, Local N-620
Tarif d'utilisation Microscope simple
Instrument confié au CI2B par le département de microbiologie


Applications

  • Microscope droit

  • Imagerie plein champ

    • Champ clair

Lumière transmise

    • Contraste de phase

    • Lumière polarisée

    • Fluorescence

  • Caméra couleur

Image Added

Image Added


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directionhorizontal


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titleDescription

Description

Sources lumineuses

  • Lampe halogène pour la lumière transmise

  • Lampe Lumencor SOLA v-nIR pour la fluorescence

Expand
titleCaractéristiques complètes
du Lumencor SOLA n-vIR
Pic d'émission (nm)Puissance nominale (mW)Puissance mesurée (mW)
39540
43035
47515
51020
55020
58020
64020
73010
Manuel

Lumencor

SOLA (anglais)

_SOLA_User Manual.pdf

Spécifications

Lumencor_SOLA

(anglais)

_Datasheet.pdf

Filtres recommandés

Lumencor

SOLA (anglais)

_SOLA_Filter_Set_Recommendations.pdf

Objectifs

  1. 4x/0.13 Air

WD 17.1

  2. 10x/0.3 Air Ph1

WD 16.0

  2. 20x/0.5 Air DIC
2.1

  2. 40x/0.75 Air Ph2

WD 0.72

  2. 60x/0.85 Air
WD 0.3
  2. 100x/1.
3
  1. 3 Huile Ph3
WD 0.2
Expand
titleCaractéristiques complètes
des objectifs
PositionNomMarqueNom completIDGrossissementOuverture numériqueImmersionTypeDistance de travail (mm)Transmittance
(% [nm])		TechniqueÉpaisseur du couvre-objet (mm)
1

4x/0.13
Air

Nikon4x/0.3 Air
Plan Fluor		MRH000404x0.13AirPlan Fluor17.1


BF, Fluo-
210x/0.3
Air		Nikon10x/0.3 Air
Plan Fluor Ph1 DLL		MRH1010010x0.3AirPlan Fluor16

>75% [400-800]
Max % @500nm

BF, Pol, PhC, Fluo0.17
3

20x/0.5
Air

Nikon20x/0.5 Air
Plan Fluor DIC M		MRH1020020x0.5

Air

Plan Fluor2.1
BF, Fluo0.17
4

40x/0.75
Air

Nikon40x/0.75 Air
Plan Fluor Ph2 DLL

MRH10400

40x

0.75

Air

Plan Fluor0.72>80% [400-750]
Max % @500nm		BF, Pol, PhC, Fluo0.17
560x/0.85
Air		Nikon60x/0.85 Air
Plan Fluor		MRH0060060x0.85AirPlan Fluor0.30
BF, FluoAjustable 0.11-0.23
6

100x/1.3

 Huile


Huile

Nikon100x/1.3
Oil
Huile
Plan Fluor Ph3 DLL
100x1.3
note
HuilePlan Fluor0.2>75% [400-800]
Max % @500nm
BF, Pol, PhC, Fluo0.17

BF: Champ clair (Bright-field)
Pol: Lumière polarisée
PhC: Contraste de phase

Cubes de filtres

  1. DAPI/Hoechst/AMCA
  2. FITC/EGFP
  3. TRITC/Rhodamine
  4. Texas Red
  5. Vide
  6. Vide
Expand
titleCaractéristiques complètes
des filtres
PositionNomMarqueIdentifiantFiltre d'excitation Miroir dichroïqueFiltre d'émissionCommentaire
1DAPI/Hoechst/AMCAChromaCube set 31000v2350/50x 
[325-375]		400LP460/50m
[435-485]
2FITC/EGFPChromaCube set 41001

480/40x
[460-500]

505LP

535/50m
[510-560]
3TRITC/RhodamineChroma

Cube set 41002c

545/30x
[530-560]		570LP620/60m
[590-650]
4Texas RedChroma

Cube set 41004

560/55x
[532-588]

595LP645/75m
[607-682]
5Vide





6Vide





Détecteur

Caméra couleur CMOS
  • Nikon DS-Ri2
Expand
titleCaractéristiques complètes
CameraNikon DS-Ri2
4908 x 3264 pixels, 14-bit, 6 images/s à pleine résolution

Sensor Type

CMOS

Sensor Category

Color

Nb Pixels

 16.25 M

Pixel Layout

4908 x 3264

Pixel size

7.3 um

Sensor size

36.0 mm x 23.9 mm

Sensor diameter

43.3 mm

Bit depth

14-bit
Speed at full resolution6 images/s

Max QE

77 %
Readout noise2.2 e⁻

Cooling

Passive

Dark Current

0.6 e⁻/pixel/sec

Full well capacity

60 000 e-

Dynamic Range

1:25000

Interface

USB 3.0

Mount

F-mount

Nikon_Camera_DS-Ri2_Manual.pdf

Tabs Page
title
Tabs Pageid
Guide d'utilisation
title

Guide d'utilisation

UI Expand
expandedtrue
titleDémarrage
  1. Si ce n'est pas déjà fait, allumez l'ordinateur (#1) et connectez-vous à Windows en utilisant vos identifiants UdeM
  2. Retirez la housse de protection du microscope
  3. Allumez
l’ordinateur (#1)Allumez
  1. la multiprise
d’alimentation du microscope 
  1. d’alimentation (#2)
Appuyez
  1. sur
le bouton mode de la télécommande de du Lumencor SOLA (#3)
  1. la droite du microscope

  2. Si la lumière transmise est nécessaire, allumez l’interrupteur sur le côté droit du microscope (#4)

Utilisez vos identifiants UdM pour vous connecter à Windows

Info
  1. Lors de la première utilisation de l'instrument , il est nécessaire
d’importer les paramètres
  1. d'importer la configuration du microscope
dans
  1. avant de démarrer le logiciel.
Pour ce faire, suivre les instructions Paramétrage du logiciel
  1. Voir la section « Première utilisation » ci-dessous.

  2. Démarrez le logiciel NIS-Elements

  3. Démarrez le logiciel Lumencor SOLA Controller
UI Expand
title
Paramétrage du logicielLors de
Première utilisation

Lorsque vous utilisez l’instrument pour la première

utilisation

fois, il est nécessaire d’importer la configuration du microscope dans le logiciel

les paramètres spécifiques au microscope

. Cette procédure est

habituellement réalisée

généralement effectuée lors de la séance de formation.


Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple. 

Toutefois, elle peut également être utilisée pour réinitialiser le logiciel en cas d'affichage incorrect ou de dysfonctionnement.

Note
Attention
,
: lancer cette procédure
supprimera
effacera tous vos protocoles
 d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel
d'expérience et réinitialisera le logiciel à ses paramètres d'usine. Demandez de l'aide si vous n’êtes pas certain de vouloir continuer.
  1. Si ouvert, fermez le
logiciel 
  1. logiciel NIS-Elements et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
  2. Sur le Bureau ouvrez le dossier
Logiciels
  1. Softwares
  2. Ouvrez le logiciel NIS Settings Utility
  3. Cliquez sur l’onglet Import
  4. Cliquez sur Browse
  5. Naviguez jusqu’à
votre bureau
  1. C:\Users\Public\Documents
  2. Sélectionnez le fichier Nikon
-
  1. _E600_NIS Settings.bin
  2. Cliquez Open
  3. Sélectionnez tous les items
  4. Cliquez Import
  5. Cliquez OK
  6. Fermez le logiciel NIS Settings Utility
  7. Vous pouvez ensuite réouvrir le logiciel NIS-Elements
UI Expand
title
Procédure pour le chargement
Chargement des échantillons
Cette

Pendant cette procédure

vous permettra de mettre

, vous allez :

  • Mettre le microscope dans une configuration

sécuritaire pour pouvoir charger

  • sécurtaire

  • Charger votre échantillon

  • Trouver et

effectuer

  • ajuster la mise au point

. À la fin de cette procédure, le microscope

Une fois terminé, votre échantillon sera prêt pour

l'acquisition.

Première mise au point

Sur le microscope :

  • Tournez la molette principale d'ajustement de la mise au point pour faire descendre la platine dans sa position la plus basse

    • l’acquisition.

    UI Expand
    titleMise au point initiale
    • Si cela n’a pas encore été fait, sélectionnez l’objectif de plus faible grossissement 4x
    Info

    Les objectifs 4× est le plus sûr à utiliser en raison de sa

    Placez l'échantillon test sur la platine du microscope avec le couvre-objet vers l'objectif

    Note
    titleImportant

    Toujours utiliser la lame de test pour effectuer la première mise au point.

    Sélectionnez l'objectif 4x

    InfoL’objectif 4x est le plus sécuritaire car il possède la plus

    grande distance de travail (17 mm).

    L'échantillon apparaitra parfaitement

    L’échantillon apparaîtra net bien avant que

    l'objectif ne s'approche de celui-ci

    l’objectif ne s’en approche. Il est recommandé de toujours faire la

    première

    mise au point d’abord avec l'objectif le plus

    sécuritaire

    sûr.

    Les

    Comme les objectifs sont

    para-focaux

    parafocaux,

    faire

    effectuer la mise au point avec

    l'objectif le plus sécuritaire vous permettra ensuite de trouver facilement votre échantillon avec un autre objectif.

    ces objectifs facilitera la localisation de l’échantillon lors du passage à des objectifs de plus fort grossissement.

    • Placez la lame test sur la platine du microscope, avec la lamelle côté objectif
    Note

    L’utilisation d’une lame test réduira considérablement le temps nécessaire pour configurer l’instrument.

    • Si nécessaire, déplacez la platine pour que l'échantillon soit centré sur l'objectif
    • Sélectionnez le mode d'imagerie désiré (Champs clair ou Fluorescence
    ). Vous trouverez dans l'onglet Trajet lumineux de cette page, les schémas qui vous permettront de suivre la lumière tout le long de son chemin au travers les différentes composantes du microscope. Ces schémas vous aideront à configurer le microscope pour le mode d'imagerie désiré.
    • :
      • Pour le champ clair utilisez le filtre #5, allumez la lampe halogène (l'interrupteur est sur le coté droit du microscope). Vous pouvez ajuster l'intensité en tournant le bouton sur le coté gauche du microscope
      • Pour la fluorescence utilisez le filtre #1 pour DAPI, #2 pour FITC, #3 pour TRITC, #4 pour TexasRed. Ouvrez l'obturateur pour la fluorescence situé sous la roue de filtre. Vous pouvez allumer ou éteindre ewt gérer l'intensité de la lumière fluorescence avec le logiciel Lumencor SOLA Controller
    info
    • Assurez-vous que la lumière soit bien visible aux oculaires avant de continuer
    .
    • Ajustez la mise au point avec la molette principale tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
    UI Expand
    titleMise au point secondaire
    Warning
    titleImportant

    Faire d’abord la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire avant de sélectionner un

    autre

    objectif

    et de poursuivre avec la mise au point secondaire

    de plus fort grossissement.

    UI Expand
    titleMise au point avec les objectifs à air

    Après avoir effectué la

    première

    mise au point

    , sur le microscope 

    initiale:

    • Sélectionnez l'objectif à air désiré (
    4x,
    • 10x, 20x, 40x ou 60x)
    Info
    L’objectif

    L’objectif 60x est le meilleur objectif à Air car il possède la plus grande ouverture numérique (0.85)

    . Il offre une résolution latérale de 448nm à une longueur d'onde de 550nm

    .

    • Ajustez la mise au
    point
    • point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

    Votre échantillon est prêt pour

    l’acquisition 

    l’acquisition !


    UI Expand
    titleMise au point avec les objectifs à
    l'
    huile

    Après avoir effectué la

    première

    mise au point

    , sur le microscope Déposer

    initiale:

    • Tournez la tourelle des objectifs pour vous placer entre les objectifs 60x et 100x (cela vous laissera de la place pour l'étape suivante)
    Info

    L’objectif 100x est le meilleur objectif à l'huile car il possède la plus grande ouverture numérique (1.4). Il offre une résolution latérale de 240nm à une longueur d'onde de 550nm.

    • Déposer une goutte d’huile sur votre échantillon

    • Tournez la tourelle des objectifs pour placer l'objectif 100x au dessus de l'échantillon

    • Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette

    Votre échantillon est prêt pour

    l’acquisition 

    l’acquisition !

    UI Expand
    titleGestion du stockage
    • Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
    • À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
    • Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
    Note

    Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:

    UI Expand
    titleFermeture
    1. Enregistrez vos données
    2. Fermez le logiciel NIS-Elements
    3. Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
  • Éteindre l'ordinateur
    1. Si vous avez utilisé des objectifs à immersion, nettoyez
    l’objectif à huile
    1. -les avec du nettoyant pour lentilles et du papier
    à lentille
    2. Sélectionnez l'objectif 4x et remettez les objectifs en position sécuritaire
    3. Éteindre
    Éteindre
    1. la multiprise d’alimentation du microscope (#2)
    2. Éteindre l'ordinateur
    3. Couvrir l’instrument avec la housse de protection
    Note
    titleRappels
    Importants
    • Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
    • Laissez le microscope et l’espace de travail propre
    Tabs Page
    idTrajet lumineux
    title
    Trajet lumineuxLes schémas suivants permettent de suivre le trajet lumineux en lumière transmise (fond clair, contraste de phase et lumière polarisée) et en lumière réfléchie (fluorescence).

    PDF
    nameLightPath_Nikon E600.pdf

    Tabs Page
    idManuals
    titleManuels
    Manuels disponibles version anglaise. Tabs Page
    idLog
    titleLog
    Section disponible dans la
    Journal

    Journal


    Section disponible dans la 

    version anglaise.


    Tabs Page
    id
    titleFiche Technique
    title

    Fiche Technique


    Section disponible dans

    la

    la version anglaise.


    Tabs Page
    idDépannage et FAQ
    titleDépannage et FAQ

    Dépannage

    UI Expand
    titleLe logiciel NIS-Elements affiche un message d'erreur: Camera Driver...

    Ceci peut survenir lorsque le logiciel NIS-Elements

     ne

    ne parvient pas à établir la connexion avec la caméra, par exemple lorsque la caméra n'est pas allumée.

    1. Fermez le logiciel NIS-Elements
    2. Allumez la caméra (la multiprise du microscope et l'interrupteur sur le dessus de la caméra)
    3. Vérifiez la connexion USB entre la caméra et l'ordinateur
    4. Allumez le logiciel NIS-Elements

    FAQ

    UI Expand
    titlePuis-je utiliser ce microscope pour observer des cellules en culture?

    Non. C'est un microscope droit conçu pour l'observation de

    spécimen

    spécimens montés entre

    lame

    lames et lamelles (d'épaisseur 0.17mm)

    .Plus de dépannage et de FAQs sont disponibles dans la version anglaise

    .

    Tabs Container
    idImage de démonstration
    titleNikon Eclipse E600
    directionhorizontal

    Image Removed

    Tabs Page
    idImage de démonstration
    titleImage de démonstration
    Cellules courtoisie de Benoit Bessette et Monique Vasseur (Biochimie)
    Images courtoisie de Dre Shirley Campbell et Emilie Fiola-Masson (Pharmacologie)

    Include Page
    Plateformes:_Plat-foot
    Plateformes:_Plat-foot

    ...