- Created by Nicolas Stifani, last updated on Apr 30, 2025 8 minute read
Microscope Zeiss LSM-900 Confocal Airyscan
Pavillon Desmarais, Local 2234
Tarif d'utilisation Microscope Avancé tier 2
Instrument octroyé au Dr Jean-Philippe Gratton par la Fondation Canadienne pour l'Innovation (FCI)
- Lumière transmise
- Contraste de phase
- DIC
- Fluorescence
- Confocal à balayage
- Super-résolution Airyscan
Zeiss LSM900
Sources lumineuses
Lampe LED pour la lumière transmise
- Laser 405nm, 488nm, 561nm, 640nm
Émission (nm) | Puissance nominale (mW) |
---|---|
405 | 30 |
488 | 25 |
561 | 25 |
640 | 45 |
- X-Cite 120LED mini pour la fluorescence visible
Émission (nm) | Puissance nominale (mW) | Puissance à l'échantillon |
---|---|---|
DAPI | ||
GFP | ||
mPlum |
Objectifs
- 5x/0.15 Ph1 Air
- 10x/0.25 Ph1 Air
- 20x/0.80 Air
- 40x/0.95 Air
- 40x/1.4 Huile
- 63x/1.4 Huile
Position | Nom | Marque | Nom complet | Identifiant | Grossissement | Ouverture numérique | Immersion | Type | Distance de travail (mm) | Transmittance (% [nm]) | Applications | Épaisseur lamelle (mm) |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
1 | 5x/0.15 Ph1 Air | Zeiss | 5x/0.15 Ph1 Air | 5x | 0.15 | Air | N-AchroPlan | 12.0 | Non Disponible | BF, PhC, Fluo | 0.17 | |
2 | 10x/0.25 Ph1 Air | Zeiss | 10x/0.25 Ph1 Air N-AchroPlan | 10x | 0.25 | Air | N-AchroPlan | 6.5 | Non Disponible | BF, PhC, Fluo | 0.17 | |
3 | 20x/0.8 Air | Zeiss | 20x/0.8 Air | 20x | 0.8 | Air | Plan-Apochromat | 0.55 | BF, DIC, Fluo | 0.17 | ||
4 | 40x/0.95 Air | Zeiss | 40x/0.95 Air | 40x | 0.95 | Air | Plan-Apochromat | 0.25 | BF, DIC, Fluo | Variable | ||
5 | 40x/1.4 Huile | Zeiss | 40x/1.4 Huile | 40x | 1.4 | Huile | Plan-Apochromat | 0.13 | BF, DIC, Fluo | 0.17 | ||
6 | 63x/1.4 Huile | Zeiss | 63x/1.4 Huile | 63x | 1.4 | Huile | Plan-Apochromat | 0.19 | BF, DIC, Fluo, Super-Resolution | 0.17 |
BF: Bright-field
PhC: Contraste de phase
DIC: Interference contrast
Cubes de filtres
- GFP
- DAPI
- mPlum
- DIC Analyzer
- Vide
- Vide
Position | Nom | Marque | Identifiant | Filtre d'excitation | Miroir dichroïque | Filtre d'émission | Graphique |
---|---|---|---|---|---|---|---|
1 | GFP Filter Set 38 | Zeiss | 000000-1031-346 | BP 470/40 | FT 495 | BP 525/50 | |
2 | DAPI Filter Set 49 | Zeiss | G 365 | FT 395 | BP 445/50 | ||
3 | mPlum Filter Set 64 HE | Zeiss | 489064-0000-000 | BP 587/25 (HE) | FT 605 (HE) | BP 647/70 (HE) | |
4 | DIC Analyzer | Zeiss | 424937-9901-000 | - | - | - | - |
5 | Vide | - | - | - | - | - | - |
6 | Vide | - | - | - | - | - | - |
Détecteurs
- 2x Gallium Arsenide Phosphid (GaAsP) Photomultiplier Tube (PMT)
- 1x transmitted light Electronically Switchable Illumination and Detection module (ESID)
- 1x Airyscan detector pour objectif 63x
Si ce n'est pas déjà fait, allumez l'ordinateur (#1) et utilisez vos identifiants UdeM pour vous connecter à Windows
Retirez la housse de protection de l'instrument
Allumez les interrupteurs System (#2) et Components (#3) dans le rack sous le microscope
Tournez la clé des lasers sur ON (#4) dans le rack sous le microscope
Lors de la première utilisation, il est nécessaire d'importer les paramètres spécifiques au microscope AVANT de démarrer le logiciel. Voir la section Première utilisation ci-dessous.
- Démarrez le logiciel Zen
Lors de la première utilisation, il est nécessaire d’importer dans le logiciel les paramètres spécifiques au microscope. Cette procédure est habituellement réalisée lors de la séance de formation.
Il est cependant également possible de l’utiliser pour réinitialiser le logiciel si celui-ci ne s‘affiche pas correctement par exemple.
Attention, cette procédure supprimera tous vos protocoles d’expérience et rétablira les paramètres originaux du logiciel.
- Si nécessaire, fermez le logiciel Zen et attendre sa fermeture complète (jusqu’à 30 secondes)
- Sur le Bureau ouvrez le dossier Documentation
- Double-cliquez sur Zen Settings for LSM900
- Un script s'exécutera et une fenêtre noire apparaîtra brièvement
- Cliquez sur OK pour fermer le message Settings for Zen have been imported successfully.
- Vous pouvez ensuite démarrer le logiciel Zen
Sur l'écran tactile du microscope :
- Appuyez sur Home>Load Position pour faire descendre les objectifs dans leur position la plus basse
- Appuyez sur Set Work Position pour enregistrer cette position
- Déplacez le focus légèrement vers le haut pour supprimer le message Lower Z limit reached affiché sur l'écran tactile
- Si ce n'est pas déjà fait, appuyez sur Home>Microscope>Control>Objectives>5x pour sélectionner l'objectif 5x
- Si demandé, appuyez sur Done pour supprimer l'avertissement de nettoyage de l'huile
- Appuyez sur Home>Microscope>XYZ>Position>Z-Position>Set zero>Auto pour effectuer la calibration de la mise au point
- Appuyez sur OK pour démarrer la procédure de calibration de la mise au point
- Attendez quelques secondes que la calibration se termine
Si calibrée, la mise au point est aux alentours de Z = 1.7 mm). La valeur de la position en Z est visible sur l'écran tactile Home>Z-Position
Important
Faire d’abord la calibration de la mise au point avant d'effectuer la première mise au point.
Sur l’écran tactile du microscope :
- Si ce n'est pas déjà fait, appuyez sur Home>Microscope>Control>Objectives>5x pour sélectionner l'objectif 5xL’objectif 5x est le plus sécuritaire car il possède une grande distance de travail (12 mm). L'échantillon apparaitra parfaitement net bien avant que l'objectif ne s'approche de celui-ci. Il est recommandé de toujours faire la première mise au point avec un objectif sécuritaire. Les objectifs sont parafocaux, faire la mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire vous permettra ensuite de trouver facilement votre échantillon avec un autre objectif. L'objectif 10x est aussi sécuritaire car sa distance de travail est de 6.5 mm.
- Si ce n'est pas déjà fait, appuyez sur Home>Load Position pour faire descendre les objectifs dans la position la plus basse et appuyez sur Set Work Position pour mémoriser cette position
- Si nécessaire, déplacez la mise au point légèrement vers le haut pour supprimer le message Lower Z limit reached qui s'affiche sur l'écran tactile
Placez la lame de test sur la platine du microscope avec la lamelle vers l'objectif
Important
Toujours utiliser la lame de test pour effectuer la première mise au point.
- Si nécessaire, déplacez la platine pour que l'échantillon soit centré sur l'objectif
Sur l’ordinateur :
Ouvrez le logiciel Zen
Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (DAPI, GFP, mPlum) pour activer la configuration
Ajustez la mise au point avec la molette principale tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
Si calibrée, la mise au point est aux alentours de Z = 1.7 mm). La valeur de la position en Z est visible sur l'écran tactile Home>Z-Position
- Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination
Important
Faire d’abord la première mise au point avec l'objectif le plus sécuritaire avant de sélectionner un autre objectif et de poursuivre avec la mise au point secondaire.
Après avoir effectué la première mise au point, sur l’écran tactile du microscope :
Dans Home>Microscope>Control>Objective, appuyez sur 10x, 20x ou 40x pour sélectionner l'objectif désiré
Il y a deux (2) objectifs 40x, assurez-vous de sélectionner celui à Air.
L’objectif 40x est le meilleur objectif à Air car il possède le plus grand nombre de corrections optiques (Plan Apochromat) et la plus grande ouverture numérique (0.95) mais a un champs de vision plus restreint.
L'objectif 20x/0.8 offre le meilleur compromis Résolution / Champ de vision.
Dans le logiciel Zen :
- Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (DAPI, GFP, mPlum) pour activer la configuration
- Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
- Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination
- Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !
Après avoir effectué la première mise au point, sur l’écran tactile du microscope :
Dans Home>Microscope>Control>Objectives, appuyez sur l'objectif désiré 40x Oil ou 63x Oil. Le microscope abaissera automatiquement les objectifs pour que l'échantillon soit accessible.
Les objectifs à huile 40x et 63x offrent la même résolution spatiale car ils ont la même ouverture numérique (1.4).
L'objectif 40x à huile offre un plus grand champ de vision et transmet un peu mieux la lumière au delà 700nm.
L'objectif 63x à huile transmet un peu mieux la lumière dans le spectre visivle 440-710 et possède un meilleur Strehl ratio (90%). Il est particulièrement adapté à l'imagerie en super résolution mais son champs de vision est plus réduit.Il y a deux (2) objectifs 40x, assurez-vous de sélectionner celui à Huile.
- Déposer une seule goutte d’huile sur l'objectif
- Appuyez sur Done. Le microscope replacera automatiquement l'objectif à sa position originale.
Dans le logiciel Zen :
- Dans l’onglet Locate, sélectionnez BF ou la fluorescence désirée (DAPI, GFP, mPlum) pour activer la configuration
- Ajustez la mise au point avec la molette de précision tout en regardant dans les oculaires jusqu'à ce que l'image soit parfaitement nette
- Dans l’onglet Locate, sélectionnez Off pour éteindre l'illumination
- Votre échantillon est prêt pour l’acquisition !
- Les fichiers peuvent être sauvés temporairement (pendant l’acquisition) sur le disque local C: (bureau)
- À la fin de chaque session, copiez vos données sur votre disque externe et supprimez-les du disque local C:
- Vous pouvez stocker vos fichiers sur le disque D: (Data Storage). Si vous utilisez ce disque, veuillez créer un dossier par laboratoire en utilisant le nom de famille du chercheur principal. À l’intérieur, créez un dossier par utilisateur (Prénom_Nom).
Dans tous les cas, ne stockez pas vos fichiers sur le disque C:
- Enregistrez vos données
- Fermez le logiciel Zen
- Transférez vos données sur le disque D: (Data Storage) ou sur votre disque dur externe et les supprimer du disque local C:
- Si utilisé, nettoyez les objectifs à huile avec du nettoyant et du paper à lentille
- Sélectionnez l'objectif 5x et remettre les objectifs en position basse (Load position)
- Tournez la clé des lasers (#4) sur Off dans le module à gauche du microscope
- Éteindre l'interrupteur Components (#3) et System (#2) dans le rack sous le microscope
- Éteindre l'ordinateur
- Couvrir l’instrument avec la housse de protection
Rappels Importants
- Récupérez vos échantillons notamment ceux dans le microscope
- Laissez le microscope et l’espace de travail propre
Dépannage
La meilleure façon de résoudre un problème en microscopie est de suivre le chemin de la lumière. Vous trouverez dans l'onglet Parcours lumineux de cette page, les schémas qui vous permettront de suivre la lumière tout au long de son trajet à travers le microscope. Ouvrez le fichier Light Path En partant de la source lumineuse et en vous dirigeant vers le détecteur, vérifiez qu'il y a bien de la lumière après chaque composant du microscope
FAQ
Oui. C'est un microscope inversé conçu pour l'observation de spécimen en cultures. Les objectifs sont optimisés pour observer au travers de plaque multi-puits à fond de verre. Il est également possible d'observer des échantillons entre lame et lamelles (d'épaisseur 0.17mm).